宮本　圭 （ミヤモト　ケイ）

コミュニケーション情報 byコメンテータガイド

• コメント

  発生が進んだ細胞（分化細胞）が、分化前の状態に戻る初期化現象に関して研究を行っています。また、生殖細胞及び受精後の胚が正常に発生する理由を分子レベルで解明する研究もしています。

• 報道関連出演・掲載一覧

  ＜報道関連出演・掲載一覧＞ ●2023/8/31 　日刊工業新聞 　クローン動物作製技術の障壁一因解明について ●2020/7/1 　テレビ和歌山「WTVニュース」 　6月30日「Cell Reports」に掲載された研究論文発表会見の様子 ●2019/3/12 　読売新聞 朝日新聞 毎日新聞 日本経済新聞 　マンモス細胞核「マウス卵子内 分裂直前前の状態」について ●2017/4/17 　日本経済新聞 　クローン作製効率向上について

研究者情報

学位

• 博士（農学）（2009年03月 京都大学）

ホームページURL

https://jglobal.jst.go.jp/detail?JGLOBAL_ID=201501077756916406

J-Global ID

• 201501077756916406

プロフィール

• 2004年、京都大学農学部卒業。2009年 京都大学農学研究科博士後期課程 修了 博士(農学)。同年、英国ケンブリッジ大学ガードン研究所ガードン研究室 博士研究員。日本学術振興会海外特別研究員を経て、2012年よりハーチェルスミスリサーチフェロー、及びケンブリッジ大学ウォルソンカレッジフェロー。2015年4月より近畿大学生物理工学部 講師、2020年4月より同 准教授。

研究キーワード

• 遺伝子発現   エピジェネティックス   核移植   リプログラミング   分子発生生物学   

現在の研究分野（キーワード）

発生が進んだ細胞（分化細胞）が、分化前の状態に戻る初期化現象に関して研究を行っています。また、生殖細胞及び受精後の胚が正常に発生する理由を分子レベルで解明する研究もしています。

研究分野

• ライフサイエンス / 動物生命科学

経歴

• 2020年04月 - 現在  近畿大学生物理工学部准教授
• 2015年04月 - 2020年03月  近畿大学生物理工学部Faculty of Biology-Oriented Science and Technology講師
• 2012年04月 - 2015年03月  ケンブリッジ大学ウォルソンカレッジフェロー
• 2012年04月 - 2015年03月  ハーチェルスミスリサーチフェロー
• 2009年04月 - 2015年03月  英国ケンブリッジ大学ガードン研究所ガードン研究室博士研究員
• 2010年04月 - 2012年03月  日本学術振興会海外特別研究員
• 2007年04月 - 2009年03月  日本学術振興会特別研究員（DC2）

学歴

• 2006年04月 - 2009年03月   京都大学農学研究科博士後期課程 修了
• 2004年04月 - 2006年03月   京都大学農学研究科博士前期課程 修了
• 2000年04月 - 2004年03月   京都大学   農学部

所属学協会

• 日本分子生物学会   日本繁殖生物学会   日本胚移植学会   日本卵子学会   

研究活動情報

論文

• Incomplete activation of Alyref and Gabpb1 leads to preimplantation arrest in cloned mouse embryos.

  Shunya Ihashi; Mizuto Hamanaka; Masaya Kaji; Ryunosuke Mori; Shuntaro Nishizaki; Miki Mori; Yuma Imasato; Kimiko Inoue; Shogo Matoba; Narumi Ogonuki; Atsushi Takasu; Misaki Nakamura; Kazuya Matsumoto; Masayuki Anzai; Atsuo Ogura; Masahito Ikawa; Kei Miyamoto

  Life science alliance 6 11 2023年11月 [査読有り]
   

  Differentiated cell nuclei can be reprogrammed after nuclear transfer (NT) to oocytes and the produced NT embryos can give rise to cloned animals. However, development of NT embryos is often hampered by recurrent reprogramming failures, including the incomplete activation of developmental genes, yet specific genes responsible for the arrest of NT embryos are not well understood. Here, we searched for developmentally important genes among the reprogramming-resistant H3K9me3-repressed genes and identified Alyref and Gabpb1 by siRNA screening. Gene knockout of Alyref and Gabpb1 by the CRISPR/Cas9 system resulted in early developmental arrest in mice. Alyref was needed for the proper formation of inner cell mass by regulating Nanog, whereas Gabpb1 deficiency led to apoptosis. The supplement of Alyref and Gabpb1 mRNA supported efficient preimplantation development of cloned embryos. Alyref and Gabpb1 were silenced in NT embryos partially because of the repressed expression of Klf16 by H3K9me3. Thus, our study shows that the H3K9me3-repressed genes contain developmentally required genes, and the incomplete activation of such genes results in preimplantation arrest of cloned embryos.
• 核骨格タンパク質の機能と胚発生における役割

  坂上 凜; 宮川 靖基; 宮本 圭

  近畿大学生物理工学部紀要 50 33 - 43 2023年03月 [査読有り]
  
• Transition to the structurally vulnerable nuclear state is an integral part of mouse embryonic development

  Tanaka Masahito; Rin Sakanoue; Atsushi Takasu; Naoko Watanabe; Yuta Shimamoto; Kei Miyamoto

  bioRxiv 2023年02月 

  Abstract Upon fertilization, germ cells are reprogrammed to acquire the ability to develop into an entire organism. Whereas extensive studies have focused on epigenetic reprogramming of chromatin states during development, changes of the nucleus that surrounds chromatin are ill-defined. Here, we show that nuclei become structurally and mechanically vulnerable at the 2-cell stage during mouse embryonic development. The 2-cell stage nuclei are extraordinarily plastic and deformable in contrast to those of 1-cell and 4-cell stages. The mechanically vulnerable nuclear state is attained by autophagy-mediated loss of lamin B1 from the nuclear membrane. This developmentally programmed lamin B1 dynamics is required for chromatin organization and major zygotic genome activation. We thus demonstrate that structural reprogramming of nuclei is a major determinant of embryonic gene expression and acquisition of totipotency.
• Nuclear transfer system for the direct induction of embryonic transcripts from intra- and cross-species nuclei using mouse 4-cell embryos

  Junko Tomikawa; Christopher A. Penfold; Rena Hatakeyama; Kei Miyamoto

  STAR Protocols 3 2 101284 - 101284 2022年06月 [査読有り][招待有り]
  
• Actin nucleoskeleton in embryonic development and cellular differentiation.

  Sivagami Gunasekaran; Yasuki Miyagawa; Kei Miyamoto

  Current opinion in cell biology 76 102100 - 102100 2022年05月 [査読有り][招待有り]
   

  Dynamic assembly and disassembly of actin proteins play a key role in the cytoskeleton, but the cellular functions of actin are not only restricted to the cytoplasmic compartment. Recent studies have shown that actin spatiotemporally changes its polymerized state in the nucleus as well and such dynamic nature of actin is relevant to key nuclear events including gene expression, DNA damage response and chromatin organization. In this review, we highlight emerging roles of actin in the nuclear compartment especially in the context of embryonic development and cellular differentiation. We first explain how the actin nucleoskeleton can be formed and function in cells. Notably, nuclear actin dynamics are greatly altered when cell fates change, such as after fertilization and T cell differentiation. We discuss how the dynamic actin nucleoskeleton contributes to accomplishing developmental programs.
• Single-cell profiling of transcriptomic changes during in vitro maturation of human oocytes

  Hiroki Takeuchi; Mari Yamamoto; Megumi Fukui; Akihiro Inoue; Tadashi Maezawa; Mikiko Nishioka; Eiji Kondo; Tomoaki Ikeda; Kazuya Matsumoto; Kei Miyamoto

  Reproductive medicine and biology 21 1 e12464  2022年05月 [査読有り]
   

  PURPOSE: In vitro maturation (IVM) of human oocytes offers an invaluable opportunity for infertility treatment. However, in vitro matured oocytes often show lower developmental abilities than their in vivo counterparts, and molecular mechanisms underlying successful maturation remain unclear. In this study, we investigated gene expression profiles of in vitro matured oocytes at the single-cell level to gain mechanistic insight into IVM of human oocytes. METHODS: Human oocytes were retrieved by follicular puncture and in vitro matured. In total, 19 oocytes from 11 patients were collected and subjected to single-cell RNA-seq analyses. RESULTS: Global gene expression profiles were similar among oocytes at the same maturation stage, while a small number of oocytes showed distinct transcriptomes from those at the corresponding maturation stage. Differential gene expression analysis identified hundreds of transcripts that dynamically altered their expression during IVM, and we revealed molecular pathways and upstream regulators that may govern oocyte maturation. Furthermore, oocytes that were delayed in their maturation showed distinct transcriptomes. Finally, we identified genes whose transcripts were enriched in each stage of oocyte maturation. CONCLUSIONS: Our work uncovers transcriptomic changes during human oocyte IVM and the differential gene expression profile of each oocyte.
• Incomplete activation of developmentally required genes Alyref1 and Gabpb1 leads to preimplantation arrest in cloned mouse embryos

  Shunya Ihashi; Mizuto Hamanaka; Masaya Kaji; Miki Mori; Yuma Imasato; Misaki Nakamura; Masayuki Anzai; Kazuya Matsumoto; Masahito Ikawa; Kei Miyamoto

  bioRxiv 2022年04月 

  SUMMARY Differentiated cell nuclei can be reprogrammed after nuclear transfer (NT) to oocytes and the produced NT embryos can give rise to cloned animals. However, development of NT embryos is often hampered by recurrent reprogramming failures, including the incomplete activation of developmental genes, yet specific genes responsible for the arrest of NT embryos are not well understood. Here, we searched for developmentally important genes among the reprogramming-resistant H3K9me3-repressed genes, and identified Alyref and Gabpb1 by siRNA screening. Gene knockout of Alyref and Gabpb1 by the CRISPR/Cas9 system resulted in early developmental arrest in mice. Single embryo RNA-seq revealed that Alyref is needed for the formation of inner cell mass. The supplement of Alyref and Gabpb1 by mRNA injection supported efficient preimplantation development of cloned embryos. Thus, our study shows that the H3K9me3-repressed genes contain developmentally required genes and the incomplete activation of such genes results in preimplantation arrest of cloned embryos.
• Cell division- and DNA replication-free reprogramming of somatic nuclei for embryonic transcription.

  Junko Tomikawa; Christopher A Penfold; Takuma Kamiya; Risa Hibino; Ayumi Kosaka; Masayuki Anzai; Kazuya Matsumoto; Kei Miyamoto

  iScience 24 11 103290  2021年11月 [査読有り]
   

  Nuclear transfer systems represent the efficient means to reprogram a cell and in theory provide a basis for investigating the development of endangered species. However, conventional nuclear transfer using oocytes of laboratory animals does not allow reprogramming of cross-species nuclei owing to defects in cell divisions and activation of embryonic genes. Here, we show that somatic nuclei transferred into mouse four-cell embryos arrested at the G2/M phase undergo reprogramming toward the embryonic state. Remarkably, genome-wide transcriptional reprogramming is induced within a day, and ZFP281 is important for this replication-free reprogramming. This system further enables transcriptional reprogramming of cells from Oryx dammah, now extinct in the wild. Thus, our findings indicate that arrested mouse embryos are competent to induce intra- and cross-species reprogramming. The direct induction of embryonic transcripts from diverse genomes paves a unique approach for identifying mechanisms of transcriptional reprogramming and genome activation from a diverse range of species.
• Improved development of mouse somatic cell nuclear transfer embryos by chlamydocin analogues, class I and IIa histone deacetylase inhibitors†.

  Satoshi Kamimura; Kimiko Inoue; Eiji Mizutani; Jin-Moon Kim; Hiroki Inoue; Narumi Ogonuki; Kei Miyamoto; Shunya Ihashi; Nobuhiko Itami; Teruhiko Wakayama; Akihiro Ito; Norikazu Nishino; Minoru Yoshida; Atsuo Ogura

  Biology of reproduction 105 2 543 - 553 2021年08月 [査読有り]
   

  In mammalian cloning by somatic cell nuclear transfer (SCNT), the treatment of reconstructed embryos with histone deacetylase (HDAC) inhibitors improves efficiency. So far, most of those used for SCNT are hydroxamic acid derivatives-such as trichostatin A-characterized by their broad inhibitory spectrum. Here, we examined whether mouse SCNT efficiency could be improved using chlamydocin analogues, a family of newly designed agents that specifically inhibit class I and IIa HDACs. Development of SCNT-derived embryos in vitro and in vivo revealed that four out of five chlamydocin analogues tested could promote the development of cloned embryos. The highest pup rates (7.1-7.2%) were obtained with Ky-9, similar to those achieved with trichostatin A (7.2-7.3%). Thus, inhibition of class I and/or IIa HDACs in SCNT-derived embryos is enough for significant improvements in full-term development. In mouse SCNT, the exposure of reconstructed oocytes to HDAC inhibitors is limited to 8-10 h because longer inhibition with class I inhibitors causes a two-cell developmental block. Therefore, we used Ky-29, with higher selectivity for class IIa than class I HDACs for longer treatment of SCNT-derived embryos. As expected, 24-h treatment with Ky-29 up to the two-cell stage did not induce a developmental block, but the pup rate was not improved. This suggests that the one-cell stage is a critical period for improving SCNT cloning using HDAC inhibitors. Thus, chlamydocin analogues appear promising for understanding and improving the epigenetic status of mammalian SCNT-derived embryos through their specific inhibitory effects on HDACs.
• Symmetrically dimethylated histone H3R2 promotes global transcription during minor zygotic genome activation in mouse pronuclei.

  Kohtaro Morita; Yuki Hatanaka; Shunya Ihashi; Masahide Asano; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  Scientific reports 11 1 10146  2021年05月 [査読有り]
   

  Paternal genome reprogramming, such as protamine-histone exchange and global DNA demethylation, is crucial for the development of fertilised embryos. Previously, our study showed that one of histone arginine methylation, asymmetrically dimethylated histone H3R17 (H3R17me2a), is necessary for epigenetic reprogramming in the mouse paternal genome. However, roles of histone arginine methylation in reprogramming after fertilisation are still poorly understood. Here, we report that H3R2me2s promotes global transcription at the 1-cell stage, referred to as minor zygotic genome activation (ZGA). The inhibition of H3R2me2s by expressing a histone H3.3 mutant H3.3R2A prevented embryonic development from the 2-cell to 4-cell stages and significantly reduced global RNA synthesis and RNA polymerase II (Pol II) activity. Consistent with this result, the expression levels of MuERV-L as minor ZGA transcripts were decreased by forced expression of H3.3R2A. Furthermore, treatment with an inhibitor and co-injection of siRNA to PRMT5 and PRMT7 also resulted in the attenuation of transcriptional activities with reduction of H3R2me2s in the pronuclei of zygotes. Interestingly, impairment of H3K4 methylation by expression of H3.3K4M resulted in a decrease of H3R2me2s in male pronuclei. Our findings suggest that H3R2me2s together with H3K4 methylation is involved in global transcription during minor ZGA in mice.
• Structural alteration of the nucleus for the reprogramming of gene expression.

  Junko Tomikawa; Kei Miyamoto

  The FEBS journal 2021年04月 [査読有り][招待有り]
   

  The regulation of gene expression is a critical process for establishing and maintaining cellular identity. Gene expression is controlled through a chromatin-based mechanism in the nucleus of eukaryotic cells. Recent studies suggest that chromatin accessibility and the higher-order structure of chromatin affect transcriptional outcome. This is especially evident when cells change their fate during development and nuclear reprogramming. Furthermore, non-chromosomal contents of the cell nucleus, namely nucleoskeleton proteins, can also affect chromatin and nuclear structures, resulting in transcriptional alterations. Here, we review our current mechanistic understanding about how chromatin and nuclear structures impact transcription in the course of embryonic development, cellular differentiation and nuclear reprogramming, and also discuss unresolved questions that remain to be addressed in the field.
• Nucleoskeleton proteins for nuclear dynamics.

  Kei Miyamoto; Masahiko Harata

  Journal of biochemistry 169 3 237 - 241 2021年01月 [査読有り][招待有り]
   

  The eukaryotic nucleus shows organized structures of chromosomes, transcriptional components and their associated proteins. It has been believed that such a dense nuclear environment prevents the formation of a cytoskeleton-like network of protein filaments. However, accumulating evidence suggests that the cell nucleus also possesses structural filamentous components to support nuclear organization and compartments, which are referred to as nucleoskeleton proteins. Nucleoskeleton proteins including lamins and actin influence nuclear dynamics including transcriptional regulation, chromatin organization and DNA damage responses. Furthermore, these nucleoskeleton proteins play a pivotal role in cellular differentiation and animal development. In this commentary, we discuss how nucleoskeleton-based regulatory mechanisms orchestrate nuclear dynamics.
• Impairment of nuclear F-actin formation and its relevance to cellular phenotypes in Hutchinson-Gilford progeria syndrome.

  Yuto Takahashi; Shogo Hiratsuka; Nanako Machida; Daisuke Takahashi; Junpei Matsushita; Pavel Hozak; Tom Misteli; Kei Miyamoto; Masahiko Harata

  Nucleus (Austin, Tex.) 11 1 250 - 263 2020年12月 [査読有り]
   

  Hutchinson-Gilford progeria syndrome (HGPS) is a premature aging disorder caused by a mutation of lamin A, which contributes to nuclear architecture and the spatial organization of chromatin in the nucleus. The expression of a lamin A mutant, named progerin, leads to functional and structural disruption of nuclear organization. Since progerin lacks a part of the actin-binding site of lamin A, we hypothesized that nuclear actin dynamics and function are altered in HGPS cells. Nuclear F-actin is required for the organization of nuclear shape, transcriptional regulation, DNA damage repair, and activation of Wnt/β-catenin signaling. Here we show that the expression of progerin decreases nuclear F-actin and impairs F-actin-regulated transcription. When nuclear F-actin levels are increased by overexpression of nuclear-targeted actin or by using jasplakinolide, a compound that stabilizes F-actin, the irregularity of nuclear shape and defects in gene expression can be reversed. These observations provide evidence for a novel relationship between nuclear actin and the etiology of HGPS.
• Visualization of endogenous nuclear F-actin in mouse embryos reveals abnormal actin assembly after somatic cell nuclear transfer.

  Taiki Shindo; Shunya Ihashi; Yuko Sakamoto; Tomomi Okuno; Junko Tomikawa; Kei Miyamoto

  Journal of biochemistry 2020年11月 [査読有り][招待有り]
   

  Actin in the nucleus, referred to as nuclear actin, is involved in a variety of nuclear events. Nuclear actin is present as a globular (G-actin) and filamentous form (F-actin), and dynamic assembly/disassembly of nuclear actin profoundly affects nuclear functions. However, it is still challenging to observe endogenous nuclear F-actin. Here, we present a condition to visualize endogenous nuclear F-actin of mouse zygotes using different fixation methods. Zygotes fixed with paraformaldehyde and treated with fluorescently conjugated phalloidin show both short and long actin filaments in their pronuclei. Short nuclear actin filaments are characteristic of phalloidin staining, rather than the consequence of severing actin filaments by the fixation process, since long nuclear actin filaments probed with the nuclear actin chromobody are not disassembled into short filaments after fixation with paraformaldehyde. Furthermore, we find that nuclear actin assembly is impaired after somatic cell nuclear transfer (SCNT), suggesting abnormal nucleoskeleton structures in SCNT embryos. Taken together, our presented method for visualizing nuclear F-actin with phalloidin can be used to observe the states of nuclear actin assembly, and revealed improper reprogramming of actin nucleoskeleton structures in cloned mouse embryos.
• Zygotic Nuclear F-Actin Safeguards Embryonic Development.

  Tomomi Okuno; Wayne Yang Li; Yu Hatano; Atsushi Takasu; Yuko Sakamoto; Mari Yamamoto; Zenki Ikeda; Taiki Shindo; Matthias Plessner; Kohtaro Morita; Kazuya Matsumoto; Kazuo Yamagata; Robert Grosse; Kei Miyamoto

  Cell reports 31 13 107824 - 107824 2020年06月 [査読有り]
   

  After fertilization, sperm and oocyte nuclei are rapidly remodeled to form swollen pronuclei (PN) in mammalian zygotes, and the proper formation and function of PN are key to producing totipotent zygotes. However, how mature PN are formed has been unclear. We find that filamentous actin (F-actin) assembles in the PN of mouse zygotes and is required for fully functional PN. The perturbation of nuclear actin dynamics in zygotes results in the misregulation of genes related to genome integrity and abnormal development of mouse embryos. We show that nuclear F-actin ensures DNA damage repair, thus preventing the activation of a zygotic checkpoint. Furthermore, optogenetic control of cofilin nuclear localization reveals the dynamically regulated F-actin nucleoskeleton in zygotes, and its timely disassembly is needed for developmental progression. Nuclear F-actin is a hallmark of totipotent zygotic PN, and the temporal regulation of its polymerized state is necessary for normal embryonic development.
• The Actin-Family Protein Arp4 Is a Novel Suppressor for the Formation and Functions of Nuclear F-Actin.

  Shota Yamazaki; Christian Gerhold; Koji Yamamoto; Yuya Ueno; Robert Grosse; Kei Miyamoto; Masahiko Harata

  Cells 9 3 2020年03月 [査読有り]
   

  The crosstalk between actin and actin-related proteins (Arps), namely Arp2 and Arp3, plays a central role in facilitating actin polymerization in the cytoplasm and also in the nucleus. Nuclear F-actin is required for transcriptional regulation, double-strand break repair, and nuclear organization. The formation of nuclear F-actin is highly dynamic, suggesting the involvement of positive and negative regulators for nuclear actin polymerization. While actin assembly factors for nuclear F-actin have been recently described, information about inhibitory factors is still limited. The actin-related protein Arp4 which is predominantly localized in the nucleus, has been previously identified as an integral subunit of multiple chromatin modulation complexes, where it forms a heterodimer with monomeric actin. Therefore, we tested whether Arp4 functions as a suppressor of nuclear F-actin formation. The knockdown of Arp4 (Arp4 KD) led to an increase in nuclear F-actin formation in NIH3T3 cells, and purified Arp4 potently inhibited F-actin formation in mouse nuclei transplanted into Xenopus laevis oocytes. Consistently, Arp4 KD facilitated F-actin-inducible gene expression (e.g., OCT4) and DNA damage repair. Our results suggest that Arp4 has a critical role in the formation and functions of nuclear F-actin.
• Perturbation of maternal PIASy abundance disrupts zygotic genome activation and embryonic development via SUMOylation pathway.

  Higuchi C; Yamamoto M; Shin SW; Miyamoto K; Matsumoto K

  Biology open 8 10 bio048652 - bio048652 2019年10月 [査読有り]
  
• Active Fluctuations of the Nuclear Envelope Shape the Transcriptional Dynamics in Oocytes.

  Almonacid M; Al Jord A; El-Hayek S; Othmani A; Coulpier F; Lemoine S; Miyamoto K; Grosse R; Klein C; Piolot T; Mailly P; Voituriez R; Genovesio A; Verlhac MH

  Developmental cell 2019年10月 [査読有り]
  
• 2万8千年前のケナガマンモス組織から得られたタンパク質の翻訳後修飾の解析

  西端 智也; 永井 宏平; 山縣 一夫; 宮本 裕史; 安齋 政幸; 加藤 博己; 宮本 圭; 東 里香; Kolodeznikov Igor I.; Protopopov Albert V.; Plotnikov Valerii V.; 細井 美彦; 三谷 匡; 松本 和也; 入谷 明

  電気泳動 63 Suppl. 195 - 195 日本電気泳動学会 2019年07月
• 2万8千年前のケナガマンモスの筋肉組織と骨髄組織のプロテオーム解析

  永井 宏平; 宮本 裕史; 安齋 政幸; 東 里香; 西端 智也; 山縣 一夫; 加藤 博己; 宮本 圭; Kolodeznikov Igor I.; Protopopov Albert V.; Plotnikov Valerii V.; 細井 美彦; 三谷 匡; 松本 和也; 入谷 明

  電気泳動 63 Suppl. 196 - 196 日本電気泳動学会 2019年07月
• Signs of biological activities of 28,000-year-old mammoth nuclei in mouse oocytes visualized by live-cell imaging.

  Yamagata K; Nagai K; Miyamoto H; Anzai M; Kato H; Miyamoto K; Kurosaka S; Azuma R; Kolodeznikov II; Protopopov AV; Plotnikov VV; Kobayashi H; Kawahara-Miki R; Kono T; Uchida M; Shibata Y; Handa T; Kimura H; Hosoi Y; Mitani T; Matsumoto K; Iritani A

  Scientific reports 9 1 4050 - 4050 2019年03月 [査読有り]
   

  The 28,000-year-old remains of a woolly mammoth, named 'Yuka', were found in Siberian permafrost. Here we recovered the less-damaged nucleus-like structures from the remains and visualised their dynamics in living mouse oocytes after nuclear transfer. Proteomic analyses demonstrated the presence of nuclear components in the remains. Nucleus-like structures found in the tissue homogenate were histone- and lamin-positive by immunostaining. In the reconstructed oocytes, the mammoth nuclei showed the spindle assembly, histone incorporation and partial nuclear formation; however, the full activation of nuclei for cleavage was not confirmed. DNA damage levels, which varied among the nuclei, were comparable to those of frozen-thawed mouse sperm and were reduced in some reconstructed oocytes. Our work provides a platform to evaluate the biological activities of nuclei in extinct animal species.
• Various nuclear reprogramming systems using egg and oocyte materials.

  Miyamoto K

  The Journal of reproduction and development 65 3 203 - 208 2019年02月 [査読有り][招待有り]
  
• 受精卵およびクローン胚におけるエピジェネティックリプログラミング

  奥野智美; 松本和也; 宮本 圭

  日本胚移植学雑誌 40 3 117 - 122 2018年09月 [査読有り][招待有り]
  
• Chromatin Accessibility Impacts Transcriptional Reprogramming in Oocytes.

  Miyamoto K; Nguyen KT; Allen GE; Jullien J; Kumar D; Otani T; Bradshaw CR; Livesey FJ; Kellis M; Gurdon JB

  Cell reports 24 2 304 - 311 2018年07月 [査読有り]
  
• Combinational Treatment of Trichostatin A and Vitamin C Improves the Efficiency of Cloning Mice by Somatic Cell Nuclear Transfer.

  Rika Azuma; Kei Miyamoto; Mami Oikawa; Masayasu Yamada; Masayuki Anzai

  Journal of visualized experiments : JoVE 134 e57036  2018年04月 [査読有り][招待有り]
   

  Somatic cell nuclear transfer (SCNT) provides a unique opportunity to directly produce a cloned animal from a donor cell, and it requires the use of skillful techniques. Additionally, the efficiencies of cloning have remained low since the successful production of cloned animals, especially mice. There have been many attempts to improve the cloning efficiency, and trichostatin A (TSA), a histone deacetylase inhibitor, has been widely used to enhance the efficiency of cloning. Here, we report a dramatically improved cloning method in mice. This somatic cell nuclear transfer method involves usage of Hemagglutinating virus of Japan Envelope (HVJ-E), which enables easy manipulation. Moreover, the treatment using two small molecules, TSA and vitamin C (VC), with deionized bovine serum albumin (dBSA), is highly effective for embryonic development. This approach requires neither additional injection nor genetic manipulation, and thus presents a simple, suitable method for practical use. This method could become a technically feasible approach for researchers to produce genetically modified animals from cultured cells. Furthermore, it might be a useful way for the rescue of endangered animals via cloning.
• Srf destabilizes cellular identity by suppressing cell-type-specific gene expression programs.

  Takashi Ikeda; Takafusa Hikichi; Hisashi Miura; Hirofumi Shibata; Kanae Mitsunaga; Yosuke Yamada; Knut Woltjen; Kei Miyamoto; Ichiro Hiratani; Yasuhiro Yamada; Akitsu Hotta; Takuya Yamamoto; Keisuke Okita; Shinji Masui

  Nature communications 9 1 1387 - 1387 2018年04月 [査読有り]
   

  Multicellular organisms consist of multiple cell types. The identity of these cells is primarily maintained by cell-type-specific gene expression programs; however, mechanisms that suppress these programs are poorly defined. Here we show that serum response factor (Srf), a transcription factor that is activated by various extracellular stimuli, can repress cell-type-specific genes and promote cellular reprogramming to pluripotency. Manipulations that decrease β-actin monomer quantity result in the nuclear accumulation of Mkl1 and the activation of Srf, which downregulate cell-type-specific genes and alter the epigenetics of regulatory regions and chromatin organization. Mice overexpressing Srf exhibit various pathologies including an ulcerative colitis-like symptom and a metaplasia-like phenotype in the pancreas. Our results demonstrate an unexpected function of Srf via a mechanism by which extracellular stimuli actively destabilize cell identity and suggest Srf involvement in a wide range of diseases.
• 黒毛和種去勢牛の脂肪交雑を生体評価するバイオマーカー候補タンパク質の血清プロテオーム 解析による探索

  池上春香; 松橋珠子; 永井宏平; 宮本圭; 大林賢伍; 坂口慎一; 松本和也

  関西畜産学会報 第175号 2018年03月 [査読有り]
  
• Peroxiredoxin as a functional endogenous antioxidant enzyme in pronuclei of mouse zygotes

  Kohtaro Morita; Mikiko Tokoro; Yuki Hatanaka; Chika Higuchi; Haruka Ikegami; Kouhei Nagai; Masayuki Anzai; Hiromi Kato; Tasuku Mitani; Yoshitomo Taguchi; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  Journal of Reproduction and Development 64 2 161 - 171 2018年 [査読有り]
   

  Antioxidant mechanisms to adequately moderate levels of endogenous reactive oxygen species (ROS) are important for oocytes and embryos to obtain and maintain developmental competence, respectively. Immediately after fertilization, ROS levels in zygotes are elevated but the antioxidant mechanisms during the maternal-to-zygotic transition (MZT) are not well understood. First, we identified peroxiredoxin 1 (PRDX1) and PRDX2 by proteomics analysis as two of the most abundant endogenous antioxidant enzymes eliminating hydrogen peroxide (H2O2). We here report the cellular localization of hyperoxidized PRDX and its involvement in the antioxidant mechanisms of freshly fertilized oocytes. Treatment of zygotes at the pronuclear stage with H2O2 enhanced pronuclear localization of hyperoxidized PRDX in zygotes and concurrently impaired the generation of 5-hydroxymethylcytosine (5hmC) on the male genome, which is an epigenetic reprogramming event that occurs at the pronuclear stage. Thus, our results suggest that endogenous PRDX is involved in antioxidant mechanisms and epigenetic reprogramming during MZT.
• 初期胚特異的レトロトランスポゾンMERVLの活性化に伴う核内変化

  奥野 智美; 山口 壮輝; 濱田 歩花; 竹林 真理愛; 守田 昂太郎; 樋口 智香; 神谷 拓磨; 安齋 政幸; 山縣 一夫; 細井 美彦; Jerome Jullien; 松本 和也; 宮本 圭

  生命科学系学会合同年次大会 2017年度 [2P - 0708] 生命科学系学会合同年次大会運営事務局 2017年12月
• Ubiquitin-proteasome system modulates zygotic genome activation in early mouse embryos and influences full-term development.

  Higuchi C; Shimizu N; Shin SW; Morita K; Nagai K; Anzai M; Kato H; Mitani T; Yamagata K; Hosoi Y; Miyamoto K; Matsumoto K

  The Journal of reproduction and development 64 1 65 - 74 2017年12月 [査読有り]
  
• A transient pool of nuclear F-actin at mitotic exit controls chromatin organization

  Christian Baarlink; Matthias Plessner; Alice Sherrard; Kohtaro Morita; Shinji Misu; David Virant; Eva-Maria Kleinschnitz; Robert Harniman; Dominic Alibhai; Stefan Baumeister; Kei Miyamoto; Ulrike Endesfelder; Abderrahmane Kaidi; Robert Grosse

  NATURE CELL BIOLOGY 19 12 1389 - + 2017年12月 [査読有り]
   

  Re-establishment of nuclear structure and chromatin organization after cell division is integral for genome regulation or development and is frequently altered during cancer progression. The mechanisms underlying chromatin expansion in daughter cells remain largely unclear. Here, we describe the transient formation of nuclear actin filaments (F-actin) during mitotic exit. These nuclear F-actin structures assemble in daughter cell nuclei and undergo dynamic reorganization to promote nuclear protrusions and volume expansion throughout early G1 of the cell cycle. Specific inhibition of this nuclear F-actin assembly impaired nuclear expansion and chromatin decondensation after mitosis and during early mouse embryonic development. Biochemical screening for mitotic nuclear F-actin interactors identified the actin-disassembling factor cofilin-1. Optogenetic regulation of cofilin-1 revealed its critical role for controlling timing, turnover and dynamics of F-actin assembly inside daughter cell nuclei. Our findings identify a cell-cycle-specific and spatiotemporally controlled form of nuclear F-actin that reorganizes the mammalian nucleus after mitosis.
• Reprogramming towards totipotency is greatly facilitated by synergistic effects of small molecules

  Kei Miyamoto; Yosuke Tajima; Koki Yoshida; Mami Oikawa; Rika Azuma; George E. Allen; Tomomi Tsujikawa; Tomomasa Tsukaguchi; Charles R. Bradshaw; Jerome Jullien; Kazuo Yamagata; Kazuya Matsumoto; Masayuki Anzai; Hiroshi Imai; John B. Gurdon; Masayasu Yamada

  BIOLOGY OPEN 6 4 415 - 424 2017年04月 [査読有り]
   

  Animal cloning has been achieved in many species by transplanting differentiated cell nuclei to unfertilized oocytes. However, the low efficiencies of cloning have remained an unresolved issue. Here we find that the combination of two small molecules, trichostatin A (TSA) and vitamin C (VC), under culture condition with bovine serum albumin deionized by ion-exchange resins, dramatically improves the cloning efficiency in mice and 15% of cloned embryos develop to term by means of somatic cell nuclear transfer (SCNT). The improvement was not observed by adding the non-treated, rather than deionized, bovine serum. RNA-seq analyses of SCNT embryos at the two-cell stage revealed that the treatment with TSA and VC resulted in the upregulated expression of previously identified reprogramming-resistant genes. Moreover, the expression of early-embryo-specific retroelements was upregulated by the TSA and VC treatment. The enhanced gene expression was relevant to the VC-mediated reduction of histone H3 lysine 9 methylation in SCNT embryos. Our study thus shows a simply applicable method to greatly improve mouse cloning efficiency, and furthers our understanding of how somatic nuclei acquire totipotency.
• Nuclear Actin in Development and Transcriptional Reprogramming

  Shinji Misu; Marina Takebayashi; Kei Miyamoto

  FRONTIERS IN GENETICS 8 27  2017年03月 [査読有り][招待有り]
   

  Actin is a highly abundant protein in eukaryotic cells and dynamically changes its polymerized states with the help of actin-binding proteins. Its critical function as a constituent of cytoskeleton has been well-documented. Growing evidence demonstrates that actin is also present in nuclei, referred to as nuclear actin, and is involved in a number of nuclear processes, including transcriptional regulation and chromatin remodeling. The contribution of nuclear actin to transcriptional regulation can be explained by its direct interaction with transcription machineries and chromatin remodeling factors and by controlling the activities of transcription factors. In both cases, polymerized states of nuclear actin affect the transcriptional outcome. Nuclear actin also plays an important role in activating strongly silenced genes in somatic cells for transcriptional reprogramming. When these nuclear functions of actin are considered, it is plausible to speculate that nuclear actin is also implicated in embryonic development, in which numerous genes need to be activated in a well-coordinated manner. In this review, we especially focus on nuclear actin's roles in transcriptional activation, reprogramming and development, including stem cell differentiation and we discuss how nuclear actin can be an important player in development and cell differentiation.
• Gene Resistance to Transcriptional Reprogramming following Nuclear Transfer Is Directly Mediated by Multiple Chromatin-Repressive Pathways

  Jerome Jullien; Munender Vodnala; Vincent Pasque; Mami Oikawa; Kei Miyamoto; George Allen; Sarah Anne David; Vincent Brochard; Stan Wang; Charles Bradshaw; Haruhiko Koseki; Vittorio Sartorelli; Nathalie Beaujean; John Gurdon

  MOLECULAR CELL 65 5 873 - + 2017年03月 [査読有り]
   

  Understanding the mechanism of resistance of genes to reactivation will help improve the success of nuclear reprogramming. Using mouse embryonic fibroblast nuclei with normal or reduced DNA methylation in combination with chromatin modifiers able to erase H3K9me3, H3K27me3, and H2AK119ub1 from transplanted nuclei, we reveal the basis for resistance of genes to transcriptional reprogramming by oocyte factors. A majority of genes is affected by more than one type of treatment, suggesting that resistance can require repression through multiple epigenetic mechanisms. We classify resistant genes according to their sensitivity to 11 chromatin modifier combinations, revealing the existence of synergistic as well as adverse effects of chromatin modifiers on removal of resistance. We further demonstrate that the chromatin modifier USP21 reduces resistance through its H2AK119 deubiquitylation activity. Finally, we provide evidence that H2A ubiquitylation also contributes to resistance to transcriptional reprogramming in mouse nuclear transfer embryos.
• Sperm is epigenetically programmed to regulate gene transcription in embryos

  Marta Teperek; Angela Simeone; Vincent Gaggioli; Kei Miyamoto; George E. Allen; Serap Erkek; Taejoon Kwon; Edward M. Marcotte; Philip Zegerman; Charles R. Bradshaw; Antoine H. F. M. Peters; John B. Gurdon; Jerome Jullien

  GENOME RESEARCH 26 8 1034 - 1046 2016年08月 [査読有り]
   

  For a long time, it has been assumed that the only role of sperm at fertilization is to introduce the male genome into the egg. Recently, ideas have emerged that the epigenetic state of the sperm nucleus could influence transcription in the embryo. However, conflicting reports have challenged the existence of epigenetic marks on sperm genes, and there are no functional tests supporting the role of sperm epigenetic marking on embryonic gene expression. Here, we show that sperm is epigenetically programmed to regulate embryonic gene expression. By comparing the development of sperm-and spermatid-derived frog embryos, we show that the programming of sperm for successful development relates to its ability to regulate transcription of a set of developmentally important genes. During spermatid maturation into sperm, these genes lose H3K4me2/3 and retain H3K27me3 marks. Experimental removal of these epigenetic marks at fertilization de-regulates gene expression in the resulting embryos in a paternal chromatin-dependent manner. This demonstrates that epigenetic instructions delivered by the sperm at fertilization are required for correct regulation of gene expression in the future embryos. The epigenetic mechanisms of developmental programming revealed here are likely to relate to the mechanisms involved in transgenerational transmission of acquired traits. Understanding how parental experience can influence development of the progeny has broad potential for improving human health.
• A new era of human assisted reproductive technology

  K. Miyamoto

  Journal of Mammalian Ova Research 33 2 77 - 77 2016年 [査読有り][招待有り]
  
• The Expression of TALEN before Fertilization Provides a Rapid Knock-Out Phenotype in Xenopus laevis Founder Embryos

  Kei Miyamoto; Ken-ichi T. Suzuki; Miyuki Suzuki; Yuto Sakane; Tetsushi Sakuma; Sarah Herberg; Angela Simeone; David Simpson; Jerome Jullien; Takashi Yamamoto; J. B. Gurdon

  PLOS ONE 10 11 e0142946  2015年11月 [査読有り]
   

  Recent advances in genome editing using programmable nucleases have revolutionized gene targeting in various organisms. Successful gene knock-out has been shown in Xenopus, a widely used model organism, although a system enabling less mosaic knock-out in founder embryos (F0) needs to be explored in order to judge phenotypes in the F0 generation. Here, we injected modified highly active transcription activator-like effector nuclease (TALEN) mRNA to oocytes at the germinal vesicle (GV) stage, followed by in vitro maturation and intracytoplasmic sperm injection, to achieve a full knock-out in F0 embryos. Unlike conventional injection methods to fertilized embryos, the injection of TALEN mRNA into GV oocytes allows expression of nucleases before fertilization, enabling them to work from an earlier stage. Using this procedure, most of developed embryos showed full knock-out phenotypes of the pigmentation gene tyrosinase and/or embryonic lethal gene pax6 in the founder generation. In addition, our method permitted a large 1 kb deletion. Thus, we describe nearly complete gene knock-out phenotypes in Xenopus laevis F0 embryos. The presented method will help to accelerate the production of knock-out frogs since we can bypass an extra generation of about 1 year in Xenopus laevis. Meantime, our method provides a unique opportunity to rapidly test the developmental effects of disrupting those genes that do not permit growth to an adult able to reproduce. In addition, the protocol shown here is considerably less invasive than the previously used host transfer since our protocol does not require surgery. The experimental scheme presented is potentially applicable to other organisms such as mammals and fish to resolve common issues of mosaicism in founders.
• Histone H3 lysine 9 trimethylation is required for suppressing the expression of an embryonically activated retrotransposon in Xenopus laevis

  Sarah Herberg; Angela Simeone; Mami Oikawa; Jerome Jullien; Charles R. Bradshaw; Marta Teperek; John Gurdon; Kei Miyamoto

  SCIENTIFIC REPORTS 5 14236  2015年09月 [査読有り]
   

  Transposable elements in the genome are generally silenced in differentiated somatic cells. However, increasing evidence indicates that some of them are actively transcribed in early embryos and the proper regulation of retrotransposon expression is essential for normal development. Although their developmentally regulated expression has been shown, the mechanisms controlling retrotransposon expression in early embryos are still not well understood. Here, we observe a dynamic expression pattern of retrotransposons with three out of ten examined retrotransposons (1a11, lambda-olt 2-1 and xretpos( L)) being transcribed solely during early embryonic development. We also identified a transcript that contains the long terminal repeat (LTR) of lambda-olt 2-1 and shows a similar expression pattern to lambda-olt 2-1 in early Xenopus embryos. All three retrotransposons are transcribed by RNA polymerase II. Although their expression levels decline during development, the LTRs are marked by histone H3 lysine 4 trimethylation. Furthermore, retrotransposons, especially lambda-olt 2-1, are enriched with histone H3 lysine 9 trimethylation (H3K9me3) when their expression is repressed. Overexpression of lysine-specific demethylase 4d removes H3K9me3 marks from Xenopus embryos and inhibits the repression of lambda-olt 2-1 after gastrulation. Thus, our study shows that H3K9me3 is important for silencing the developmentally regulated retrotransposon in Xenopus laevis.
• 初期胚発生におけるDNA及びヒストンメチル化修飾の重要性

  塚口 智将; 守田 昴太郎; 宮本 圭; 松本和也

  近畿大学先端技術総合研究所紀要 6号 20 1 - 8 近畿大学先端技術総合研究所 2015年03月 [査読有り]
   

  [要旨] 哺乳類の初期胚では, 分化全能性を獲得するために, 受精直後に終末分化した精子と卵子のエピゲノムの情報がリセットされる. この現象では, 遺伝子の転写制御に関与するDNA やヒストンのメチル化及びアセチル化修飾がダイナミックに変化することが知られている. 受精後, 遺伝子の転写抑制に関わるDNAのメチル化修飾は, 酵素及びDNA 複製によって取り除かれ, その後再び, DNA メチル基転移酵素（DNAmethyltransferases, DNMTs）が働くことにより, 特定の遺伝子の転写制御が行われる. ヒストンにおいては, histone methyltransferase（HMT）によるメチル化, histone acetyltransferase（HAT）によるアセチル化などの修飾がクロマチン構造の変化を誘起させ, 転写の活性あるいは抑制に関わっている. 以上のように遺伝子の発現は, DNA やヒストン修飾の相互の働きかけによって制御されていると考えられる. したがって, 初期胚で起こるDNA 及びヒストン修飾の機構やそれらの修飾の持つ役割を知ることで, エピジェネティックリプログラミングの詳細な分子機構を深く理解することができる. さらに, それらの知見をiPS細胞作製効率の向上や分化誘導の改善に応用させることで, 再生医療や創薬分野への貢献が期待される. そこで本稿では, 哺乳類の初期胚において発生に必要な遺伝子の転写制御に関与しているDNA 及びヒストンのメチル化修飾について概説する. [Abstract] In mammalian early embryo, epigenome information of sperm and oocytes is reset to acquire the developmental totipotency. This phenomenon is accompanied by the dynamic changes in DNA and histone modifications. DNA methylation involved in transcriptional repression is removed by the enzymes or DNA replication after fertilization. The genome is remethylated by DNA methyltransferases（DNMTs） and the specific set of genes is transcriptionally repressed. Histone modifications such as methylation by histone methyltransferases（HMTs） and acetylation by histone acetyltransferases（HATs） also induce changes in chromatin structure and are involved in transcriptional regulation. Therefore, gene expression regulation seems to be achieved by the combination of DNA and histone modifications. Consequently, understanding mechanisms and roles of DNA and histone modifications can be a clue to understand detailed mechanism of epigenetic reprogramming. Moreover, the basic knowledge about epigenetic reprogramming to improve iPS cell conversion and induction of differentiation would contribute to the fields of regenerative medicine and innovative drug development. Here, we will review DNA and histone methylation related totranscriptional regulation of genes necessary for development in mammalian early embryo.近畿大学先端技術総合研究所紀要編集委員会
• Manipulation and In Vitro Maturation of Xenopus laevis Oocytes, Followed by Intracytoplasmic Sperm Injection, to Study Embryonic Development

  Kei Miyamoto; David Simpson; John B. Gurdon

  JOVE-JOURNAL OF VISUALIZED EXPERIMENTS 96 e52496  2015年02月 [査読有り][招待有り]
   

  Amphibian eggs have been widely used to study embryonic development. Early embryonic development is driven by maternally stored factors accumulated during oogenesis. In order to study roles of such maternal factors in early embryonic development, it is desirable to manipulate their functions from the very beginning of embryonic development. Conventional ways of gene interference are achieved by injection of antisense oligonucleotides (oligos) or mRNA into fertilized eggs, enabling under-or over-expression of specific proteins, respectively. However, these methods normally require more than several hours until protein expression is affected, and, hence, the interference of gene functions is not effective during early embryonic stages. Here, we introduce an experimental system in which expression levels of maternal proteins can be altered before fertilization. Xenopus laevis oocytes obtained from ovaries are defolliculated by incubating with enzymes. Antisense oligos or mRNAs are injected into defolliculated oocytes at the germinal vesicle (GV) stage. These oocytes are in vitro matured to eggs at the metaphase II (MII) stage, followed by intracytoplasmic sperm injection (ICSI). By this way, up to 10% of ICSI embryos can reach the swimming tadpole stage, thus allowing functional tests of specific gene knockdown or overexpression. This approach can be a useful way to study roles of maternally stored factors in early embryonic development.
• Sperm and Spermatids Contain Different Proteins and Bind Distinct Egg Factors

  Marta Teperek; Kei Miyamoto; Angela Simeone; Renata Feret; Michael J. Deery; John B. Gurdon; Jerome Jullien

  INTERNATIONAL JOURNAL OF MOLECULAR SCIENCES 15 9 16719 - 16740 2014年09月 [査読有り][招待有り]
   

  Spermatozoa are more efficient at supporting normal embryonic development than spermatids, their immature, immediate precursors. This suggests that the sperm acquires the ability to support embryonic development during spermiogenesis (spermatid to sperm maturation). Here, using Xenopus laevis as a model organism, we performed 2-D Fluorescence Difference Gel Electrophoresis (2D-DIGE) and mass spectrometry analysis of differentially expressed proteins between sperm and spermatids in order to identify factors that could be responsible for the efficiency of the sperm to support embryonic development. Furthermore, benefiting from the availability of egg extracts in Xenopus, we also tested whether the chromatin of sperm could attract different egg factors compared to the chromatin of spermatids. Our analysis identified: (1) several proteins which were present exclusively in sperm; but not in spermatid nuclei and (2) numerous egg proteins binding to the sperm (but not to the spermatid chromatin) after incubation in egg extracts. Amongst these factors we identified many chromatin-associated proteins and transcriptional repressors. Presence of transcriptional repressors binding specifically to sperm chromatin could suggest its preparation for the early embryonic cell cycles, during which no transcription is observed and suggests that sperm chromatin has a unique protein composition, which facilitates the recruitment of egg chromatin remodelling factors. It is therefore likely that the acquisition of these sperm-specific factors during spermiogenesis makes the sperm chromatin suitable to interact with the maternal factors and, as a consequence, to support efficient embryonic development.
• Hierarchical Molecular Events Driven by Oocyte-Specific Factors Lead to Rapid and Extensive Reprogramming

  Jerome Jullien; Kei Miyamoto; Vincent Pasque; George E. Allen; Charles R. Bradshaw; Nigel J. Garrett; Richard P. Halley-Stott; Hiroshi Kimura; Keita Ohsumi; John B. Gurdon

  MOLECULAR CELL 55 4 524 - 536 2014年08月 [査読有り]
   

  Nuclear transfer to oocytes is an efficient way to transcriptionally reprogram somatic nuclei, but its mechanisms remain unclear. Here, we identify a sequence of molecular events that leads to rapid transcriptional reprogramming of somatic nuclei after transplantation to Xenopus oocytes. RNA-seq analyses reveal that reprogramming by oocytes results in a selective switch in transcription toward an oocyte rather than pluripotent type, without requiring new protein synthesis. Time-course analyses at the single-nucleus level show that transcriptional reprogramming is induced in most transplanted nuclei in a highly hierarchical manner. We demonstrate that an extensive exchange of somatic-for oocyte-specific factors mediates reprogramming and leads to robust oocyte RNA polymerase II binding and phosphorylation on transplanted chromatin. Moreover, genome-wide binding of oocyte-specific linker histone B4 supports its role in transcriptional reprogramming. Thus, our study reveals the rapid, abundant, and stepwise loading of oocyte-specific factors onto somatic chromatin as important determinants for successful reprogramming.
• Maternal factors involved in nuclear reprogramming by eggs and oocytes

  Kei Miyamoto

  Journal of Mammalian Ova Research 30 3 68 - 78 JAPANESE SOCIETY OF OVA RESEARCH 2013年10月 [査読有り][招待有り]
   

  When a somatic cell nucleus is transplanted into an egg or an oocyte, the transplanted nucleus can be reprogrammed to support early embryonic development so that the reconstructed embryo gives rise to a cloned animal. Nuclear reprogramming of somatic nuclei is induced by maternal components stored in eggs and oocytes. These endogenous reprogramming factors and mechanisms have been explored for decades in mammals and amphibia. There are several ways of investigating reprogramming mechanisms, including nuclear transfer to eggs/oocytes and incubation in egg/oocyte extracts. In this review I describe the type of reprogramming events induced in each system and what factors in eggs and oocytes are responsible for these. Based on our current knowledge, I propose a model for the early phase of nuclear reprogramming in eggs and oocytes.
  
• Transcriptional regulation and nuclear reprogramming: roles of nuclear actin and actin-binding proteins.

  Miyamoto K; Gurdon JB

  Cellular and molecular life sciences : CMLS 70 18 3289 - 3302 18 2013年09月 [査読有り][招待有り]
  
• Nuclear Wave1 Is Required for Reprogramming Transcription in Oocytes and for Normal Development

  Kei Miyamoto; Marta Teperek; Kosuke Yusa; George E. Allen; Charles R. Bradshaw; J. B. Gurdon

  SCIENCE 341 6149 1002 - 1005 2013年08月 [査読有り]
   

  Eggs and oocytes have a remarkable ability to induce transcription of sperm after normal fertilization and in somatic nuclei after somatic cell nuclear transfer. This ability of eggs and oocytes is essential for normal development. Nuclear actin and actin-binding proteins have been shown to contribute to transcription, although their mode of action is elusive. Here, we find that Xenopus Wave1, previously characterized as a protein involved in actin cytoskeleton organization, is present in the oocyte nucleus and is required for efficient transcriptional reprogramming. Moreover, Wave1 knockdown in embryos results in abnormal development and defective hox gene activation. Nuclear Wave1 binds by its WHD domain to active transcription components, and this binding contributes to the action of RNA polymerase II. We identify Wave1 as a maternal reprogramming factor that also has a necessary role in gene activation in development.
• Nuclear reprogramming of sperm and somatic nuclei in eggs and oocytes.

  Teperek M; Miyamoto K

  Reproductive medicine and biology 12 4 133 - 149 2013年06月 [査読有り][招待有り]
  
• Reprogramming and development in nuclear transfer embryos and in interspecific systems

  Patrick Narbonne; Kei Miyamoto; J. B. Gurdon

  CURRENT OPINION IN GENETICS & DEVELOPMENT 22 5 450 - 458 2012年10月 [査読有り][招待有り]
   

  Nuclear transfer (NT) remains the most effective method to reprogram somatic cells to totipotency. Somatic cell nuclear transfer (SCNT) efficiency however remains low, but recurrent problems occurring in partially reprogrammed cloned embryos have recently been identified and some remedied. In particular, the trophectoderm has been identified as a lineage whose reprogramming success has a large influence on SCNT embryo development. Several interspecific hybrid and cybrid reprogramming systems have been developed as they offer various technical advantages and potential applications, and together with SCNT, they have led to the identification of a series of reprogramming events and responsible reprogramming factors. Interspecific incompatibilities hinder full exploitation of cross-species reprogramming systems, yet recent findings suggest that these may not constitute insurmountable obstacles.
• Epigenetic factors influencing resistance to nuclear reprogramming

  Vincent Pasque; Jerome Jullien; Kei Miyamoto; Richard P. Halley-Stott; J. B. Gurdon

  TRENDS IN GENETICS 27 12 516 - 525 2011年12月 [査読有り][招待有り]
   

  Patient-specific somatic cell reprogramming is likely to have a large impact on medicine by providing a source of cells for disease modelling and regenerative medicine. Several strategies can be used to reprogram cells, yet they are generally characterised by a low reprogramming efficiency, reflecting the remarkable stability of the differentiated state. Transcription factors, chromatin modifications, and noncoding RNAs can increase the efficiency of reprogramming. However, the success of nuclear reprogramming is limited by epigenetic mechanisms that stabilise the state of gene expression in somatic cells and thereby resist efficient reprogramming. We review here the factors that influence reprogramming efficiency, especially those that restrict the natural reprogramming mechanisms of eggs and oocytes. We see this as a step towards understanding the mechanisms by which nuclear reprogramming takes place.
• Nuclear actin in transcriptional reprogramming by oocytes Are actin nucleators key players?

  Kei Miyamoto; Vincent Pasque; John B. Gurdon

  CELL CYCLE 10 18 3040 - 3041 2011年09月 [査読有り][招待有り]
  
• Nuclear actin and transcriptional activation.

  Miyamoto K; Gurdon JB

  Communicative & integrative biology 4 5 582 - 583 5 2011年09月 [査読有り][招待有り]
  
• Mechanisms of nuclear reprogramming by eggs and oocytes: a deterministic process?

  Jerome Jullien; Vincent Pasque; Richard P. Halley-Stott; Kei Miyamoto; J. B. Gurdon

  NATURE REVIEWS MOLECULAR CELL BIOLOGY 12 7 453 - 459 2011年07月 [査読有り][招待有り]
   

  Differentiated cells can be experimentally reprogrammed back to pluripotency by nuclear transfer, cell fusion or induced pluripotent stem cell technology. Nuclear transfer and cell fusion can lead to efficient reprogramming of gene expression. The egg and oocyte reprogramming process includes the exchange of somatic proteins for oocyte proteins, the post-translational modification of histones and the demethylation of DNA. These events occur in an ordered manner and on a defined timescale, indicating that reprogramming by nuclear transfer and by cell fusion rely on deterministic processes.
• Nuclear actin polymerization is required for transcriptional reprogramming of Oct4 by oocytes

  Kei Miyamoto; Vincent Pasque; Jerome Jullien; John B. Gurdon

  GENES & DEVELOPMENT 25 9 946 - 958 2011年05月 [査読有り]
   

  Amphibian oocytes can rapidly and efficiently reprogram the transcription of transplanted somatic nuclei. To explore the factors and mechanisms involved, we focused on nuclear actin, an especially abundant component of the oocyte's nucleus (the germinal vesicle). The existence and significance of nuclear actin has long been debated. Here, we found that nuclear actin polymerization plays an essential part in the transcriptional reactivation of the pluripotency gene Oct4 (also known as Pou5f1). We also found that an actin signaling protein, Toca-1, enhances Oct4 reactivation by regulating nuclear actin polymerization. Toca-1 overexpression has an effect on the chromatin state of transplanted nuclei, including the enhanced binding of nuclear actin to gene regulatory regions. This is the first report showing that naturally stored actin in an oocyte nucleus helps transcriptional reprogramming in a polymerization-dependent manner.
• Identification and characterization of an oocyte factor required for development of porcine nuclear transfer embryos

  Kei Miyamoto; Kouhei Nagai; Naoya Kitamura; Tomoaki Nishikawa; Haruka Ikegami; Nguyen T. Binh; Satoshi Tsukamoto; Mai Matsumoto; Tomoyuki Tsukiyama; Naojiro Minami; Masayasu Yamada; Hiroyoshi Ariga; Masashi Miyake; Tatsuo Kawarasaki; Kazuya Matsumoto; Hiroshi Imai

  PROCEEDINGS OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE UNITED STATES OF AMERICA 108 17 7040 - 7045 2011年04月 [査読有り]
   

  Nuclear reprogramming of differentiated cells can be induced by oocyte factors. Despite numerous attempts, these factors and mechanisms responsible for successful reprogramming remain elusive. Here, we identify one such factor, necessary for the development of nuclear transfer embryos, using porcine oocyte extracts in which some reprogramming events are recapitulated. After incubating somatic nuclei in oocyte extracts from the metaphase II stage, the oocyte proteins that were specifically and abundantly incorporated into the nuclei were identified by mass spectrometry. Among 25 identified proteins, we especially focused on a multifunctional protein, DJ-1. DJ-1 is present at a high concentration in oocytes from the germinal vesicle stage until embryos at the four-cell stage. Inhibition of DJ-1 function compromises the development of nuclear transfer embryos but not that of fertilized embryos. Microarray analysis of nuclear transfer embryos in which DJ-1 function is inhibited shows perturbed expression of P53 pathway components. In addition, embryonic arrest of nuclear transfer embryos injected with anti-DJ-1 antibody is rescued by P53 inhibition. We conclude that DJ-1 is an oocyte factor that is required for development of nuclear transfer embryos. This study presents a means for identifying natural reprogramming factors in mammalian oocytes and a unique insight into the mechanisms underlying reprogramming by nuclear transfer.
• Efficiencies and mechanisms of nuclear reprogramming

  V. Pasque; K. Miyamoto; J.B. Gurdon

  Cold Spring Harb Symp Quant Biol 75 189 - 200 2010年11月 [査読有り][招待有り]
  
• Mammalian nuclear transplantation to Germinal Vesicle stage Xenopus oocytes - A method for quantitative transcriptional reprogramming

  R. P. Halley-Stott; V. Pasque; C. Astrand; K. Miyamoto; I. Simeoni; J. Jullien; J. B. Gurdon

  METHODS 51 1 56 - 65 2010年05月 [査読有り][招待有り]
   

  Full-grown Xenopus oocytes in first meiotic prophase contain an immensely enlarged nucleus, the Germinal Vesicle (GV), that can be injected with several hundred somatic cell nuclei. When the nuclei of mammalian somatic cells or cultured cell lines are injected into a GV, a wide range of genes that are not transcribed in the donor cells, including pluripotency genes, start to be transcriptionally activated, and synthesize primary transcripts continuously for several days. Because of the large size and abundance of Xenopus laevis oocytes, this experimental system offers an opportunity to understand the mechanisms by which somatic cell nuclei can be reprogrammed to transcribe genes characteristic of oocytes and early embryos. The use of mammalian nuclei ensures that there is no background of endogenous maternal transcripts of the kind that are induced. The induced gene transcription takes place in the absence of cell division or DNA synthesis and does not require protein synthesis. Here we summarize new as well as established results that characterize this experimental system. In particular, we describe optimal conditions for transplanting somatic nuclei to oocytes and for the efficient activation of transcription by transplanted nuclei. We make a quantitative determination of transcript numbers for pluripotency and housekeeping genes, comparing cultured somatic cell nuclei with those of embryonic stem cells. Surprisingly we find that the transcriptional activation of somatic nuclei differs substantially from one donor cell-type to another and in respect of different pluripotency genes. We also determine the efficiency of an injected mRNA translation into protein. (C) 2010 Elsevier Inc. All rights reserved.
• Cell-Free Extracts from Mammalian Oocytes Partially Induce Nuclear Reprogramming in Somatic Cells

  Kei Miyamoto; Tomoyuki Tsukiyama; Yang Yang; Ning Li; Naojiro Minami; Masayasu Yamada; Hiroshi Imai

  BIOLOGY OF REPRODUCTION 80 5 935 - 943 2009年05月 [査読有り]
   

  Nuclear transfer has been regarded as the only reliable tool for studying nuclear reprogramming of mammalian somatic cells by oocytes. However, nuclear transfer is not well suited for biochemical analyses of the molecular mechanisms of reprogramming. A cell-free system from oocytes is an attractive alternative way to mimic reprogramming in vitro, since a large number of cells can be treated and analyzed. Nevertheless, a cell-free system using oocytes has not been developed in mammals. Here, cell extracts from porcine oocytes were prepared and their ability to induce nuclear reprogramming was evaluated. Extracts from metaphase II (MII) oocytes erased the machinery for regulating gene expression in reversibly permeabilized somatic cells. For example, the extracts caused histone deacetylation and the disappearance of TATA box-binding protein from the nuclei. However, MII-extract-treated cells did not show any obvious changes after cell culture. In contrast, extracts from germinal vesicle (GV) oocytes activated pluripotent marker genes, especially NANOG, and induced partial dedifferentiation after cell culture. The activation of pluripotent marker genes by GV extracts was associated with histone acetylation that was induced during extract treatment. These results indicate that GV- and MII-oocyte extracts have different roles on nuclear reprogramming. Furthermore, both oocyte extracts induced site-specific demethylation in the upstream region of NANOG. These results indicate that cell-free extracts derived from GV- and MII-oocytes could be useful for studying the mechanisms involved in nuclear reprogramming.
• Reversible Membrane Permeabilization of Mammalian Cells Treated with Digitonin and Its Use for Inducing Nuclear Reprogramming by Xenopus Egg Extracts

  Kei Miyamoto; Teruyoshi Yamashita; Tomoyuki Tsukiyama; Naoya Kitamura; Naojiro Minami; Masayasu Yamada; Hiroshi Imai

  CLONING AND STEM CELLS 10 4 535 - 542 2008年12月 [査読有り]
   

  Plasma membranes can be reversibly permeabilized by Streptolysin O. The permeabilized cells can be reprogrammed and partially dedifferentiated in the cell-free system from egg extracts. However, the permeabilizing activity of Streptolysin 0 is not stable, and therefore it is difficult to control its activity. An alternative method for reversible permeabilization is useful for establishing a cell-free system. Here, we used a nonionic detergent, digitonin, for permeabilization. A low concentration of digitonin induced reversible permeabilization of the plasma membrane in bovine, mouse, and porcine somatic cells. The permeabilized cells were treated with Xenoptis laevis egg extracts. The treated cells showed exchange of nuclear proteins from extracts such as incorporation of Xenopus-specific histone B4 and Lamin LIII into nuclei. After resealing of the membrane, the cells showed upregulation of OCT4, SOX2, and NANOG expression. Our results suggest that reversible permeabilization with digitonin can be used to induce nuclear reprogramming and to activate pluripotent genes by a cell-free system.
• Mammalian oocyte extracts induce chromatin remodeling and dedifferentiation of somatic cells, but do not global demethylation

  K. Miyamoto; T. Tsukiyama; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  REPRODUCTION IN DOMESTIC ANIMALS 43 194 - 194 2008年07月 [査読有り]
  
• Reprogramming of mouse embryonic fibroblasts by cell-free extracts from nanog-overexpressing embryonic stem cells

  Tomoyuki Tsukiyama; Kei Miyamoto; Naojiro Minami; Masayasu Yamada; Hiroshi Imai

  BIOLOGY OF REPRODUCTION 85 - 85 2008年 [査読有り]
  
• DNA demethylation associated with nuclear reprogramming of the somatic cell genome in cell-free extracts from mammalian oocytes

  Kei Miyamoto; Tomoyuki Tsukiyama; Yang Yang; Ning Li; Naojiro Minami; Masayasu Yamada; Hiroshi Imai

  BIOLOGY OF REPRODUCTION 55 - 55 2008年 [査読有り]
  
• Reprogramming events of mammalian somatic cells induced by Xenopus laevis egg extracts

  Kei Miyamoto; Tadashi Furusawa; Mari Ohnuki; Sandeep Goel; Tomoyuki Tokunaga; Naojiro Minami; Masayasu Yamada; Keita Ohsumi; Hiroshi Imai

  MOLECULAR REPRODUCTION AND DEVELOPMENT 74 10 1268 - 1277 2007年10月 [査読有り]
   

  It is known that differentiated cells can be reprogrammed to an undifferentiated state in oocyte cytoplasm after nuclear transfer. Recently, some reports suggested that Xenopus egg extracts have the ability to reprogram mammalian somatic cells. Reprogramming events of mammalian cells after Xenopus egg extract treatment and after cell culture of extract-treated cells have not been elucidated. In this experiment, we examined reprogramming events in reversibly permeabilized or nonpermeabilized porcine fibroblast cells after Xenopus egg extract treatment. The Xenopus egg-specific histone 134 was assembled on porcine chromatin and nuclear lamin LIII was incorporated into nuclei. Deacetylation of histone H3 at lysine 9 in extract-treated cells was detected in nonpermeabilized cells, suggesting that a part of reprogramming may be induced even in nonpermeabilized cells. Following culture of extract-treated cells, the cells began to express the pluripotent marker genes such as POU5F1 (OCT4) and SOX2 and to form colonies. Reactivation of the OCT4 gene in extract-treated cells was also confirmed in bovine fibroblasts transformed with an OCT4-EGFP construct. These results suggest that nuclei of mammalian cells can be partially reprogrammed to an embryonic state by Xenopus egg extracts and the remodeled cells partly dedifferentiate after cell culture. A system using egg extracts may be useful for understanding the mechanisms and processes of dedifferentiation and reprogramming of mammalian somatic cells after nuclear transfer.
• Effects of synchronization of donor cell cycle on embryonic development and DNA synthesis in porcine nuclear transfer embryos

  Kei Miyamoto; Yoichiro Hoshino; Naojiro Minami; Masayasu Yamada; Hiroshi Imai

  JOURNAL OF REPRODUCTION AND DEVELOPMENT 53 2 237 - 246 2007年04月 [査読有り]
   

  The relationship between donor cell cycle and the developmental ability of somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos has not fully been elucidated. Donor cells that are usually prepared by serum starvation or confluent-cell culture for SCNT represent a heterogeneous population that includes mainly G0 phase cells, other cells in different phases of the cell cycle and apoptotic cells. In this study, we compared the developmental ability of porcine SCNT embryos reconstructed from G0 phase cells (GO-SCNT embryos) and strictly synchronized-G1 phase cells (G1-SCNT embryos), and examined the developmental rates and timing of first DNA synthesis. The G0 phase cells were synchronized by confluent culture, and the G1 phase cells were prepared from actively dividing M phase cells. The G1-SCNT embryos showed a significantly higher (P<0.05) developmental rate to the blastocyst stage per cleaved embryo (59%) than the G0-SCNT embryos (43%). Moreover, initiation of first DNA synthesis and cleavage occurred significantly earlier in the G1-SCNT embryos than in the G0-SCNT embryos. Delay of initiation of first DNA synthesis in the SCNT embryos by aphidicolin resulted in decreased developmental rates to the blastocyst stage without any effect on cleavage rates. Our data demonstrates that synchronized-G1 phase cells can be used as donor cells for SCNT embryos and that earlier initiation of first DNA synthesis may be important for subsequent development of SCNT embryos. The SCNT system using G1-synchronized cells, in terms of their highly uniform and viable cell states, can be useful for studying the reprogramming processes and embryonic development of SCNT embryos.
• Nuclear reprogramming of porcine cells and their use as donor cell for nuclear transfer after treatment in Xenopus egg extracts

  K. Miyamoto; M. Ohnuki; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  REPRODUCTION FERTILITY AND DEVELOPMENT 19 1 150 - 150 2007年 [査読有り]
  
• 無細胞抽出系を用いた培養細胞のリプログラミングとその応用

  宮本 圭; 今井 裕

  日本胚移植学雑誌 28 2 81 - 87 2006年05月 [査読有り]
  
• Nuclear reprogramming of porcine fibroblast cells by Xenopus egg extracts.

  Miyamoto K; Nagao Y; Minami N; Yamada M; Ohsumi K; Imai H

  32nd International Embryo Transfer Society 2006年 [査読有り]
  
• 53 CELL CYCLE SYNCHRONIZATION OF DONOR CELLS AT G1 PHASE AND DEVELOPMENTAL ABILITY OF NUCLEAR TRANSFER EMBRYOS IN MINIATURE PIGS

  K Miyamoto; Y Hoshino; Y Nagao; N Minami; M Yamada; H Imai

  Reproduction, Fertility and Development 17 2 176 - 176 2004年12月 [査読有り]
  

書籍

• 生命科学の未来を切り拓く マンモス復活プロジェクト,「Newton 近畿大学の理系学部と研究所を大特集 近畿大学 大解剖 vol.2 」

  松本和也; 三谷匡; 加藤博巳; 宮本裕史; 山縣一夫; 安齋政幸; 永井宏平; 宮本圭; 黒坂哲 ニュートンプレス 2021年07月
• 次世代の核移植技術の利用に向けて、Campus & Conference探訪記、「実験医学」

  宮本圭 羊土社 2016年
• 最先端と伝統が共存する場所、Lab Report、「実験医学」

  宮本圭 羊土社 2015年
• 母性因子Wave1は転写のリプログラミングと正常な胚発生に必要である、「実験医学」

  宮本圭 羊土社 2014年
• Biology & Pathology of the Oocyte

  宮本圭; John Gurdon (担当:分担執筆範囲:Insights into the amphibian egg to understand the mammalian oocyte.)Cambridge University Press 2013年
• ジョン・ガードン～リプログラミングの父「科学」

  宮本圭 岩波書店 2013年01月
• 卵細胞抽出液を用いた体細胞のリプログラミング誘導、「幹細胞の分化誘導と応用」

  宮本圭; 今井 裕 エヌ・ティー・エス出版 2009年

講演・口頭発表等

• マウスの胚核の物理的再プログラム化  [招待講演]

  宮本圭

  第46回 日本分子生物学会年会 2023年11月 シンポジウム・ワークショップパネル（指名）
• 異種間核移植技術を用いた野生由来マウスES細胞の樹立

  渡邉 奈穂美; 廣瀬 美智子; 長谷川 歩未; 持田 慶司; 井橋 俊哉; 宮本 圭; 小倉 淳郎; 井上 貴美子

  第116回 日本繁殖生物学会大会 2023年09月 口頭発表（一般）
• 初期胚発生における核内Fアクチンの役割の解明  [通常講演]

  宮川 靖基; 坂上 凜; 眞銅 大暉; 坂本 裕子; 三島 花心; 井橋 俊哉; 鷹巣 篤志; 井上 明裕; 門野 莉紗; 西崎 俊太朗; 森 龍之介; 松本 和也; 宮本 圭

  第116回 日本繁殖生物学会大会 2023年09月 口頭発表（一般）
• 高品質受精卵選別法の確立に向けたバイオマーカー候補の探索  [通常講演]

  井上 明裕; 山本 真里; 井橋 俊哉; 鷹巣 篤志; 林 真那; 坂上 凜; 門野 莉紗; 西崎 俊太朗; 宮川 靖基; 森 龍之介; 松本 和也; 宮本 圭

  第116回 日本繁殖生物学会大会 2023年09月 口頭発表（一般）
• マウス2細胞期胚におけるラミンB1の一過的な減少は胚性ゲノム活性化に重要である

  坂上 凜; 田中 真仁; 鷹巣 篤志; 宮川 靖基; 渡辺 直子; 島本 勇太; 宮本 圭

  第116回 日本繁殖生物学会大会 2023年09月
• Reprogramming of nuclear structures for embryonic development in mouse.  [招待講演]

  Miyamoto K

  DevStem Seminar (Nantes, France) 2023年08月
• 哺乳類胚発生予測のための母性転写産物の同定及び予測法の確立に向けて  [通常講演]

  井上 明裕; Nicole Cheung; 山本真理; 塚口智将; 武内 大輝; 福井 愛実; 前沢 忠志; 西岡 美喜子; 池田 智明; 山之内 忠幸; 松田 秀雄; 井橋 俊哉; 鷹巣 篤志; 坂上 凛; 林 真那; 西崎俊太朗; 宮川靖基; 森龍之介; 門野莉紗; 松本和也; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 口頭発表（一般）
• 哺乳類胚発生予測のための母性転写産物の同定及び予測法の確立に向けて  [通常講演]

  井上 明裕; Nicole Cheung; 山本真理; 塚口智将; 武内 大輝; 福井 愛実; 前沢 忠志; 西岡 美喜子; 池田 智明; 山之内 忠幸; 松田 秀雄; 井橋 俊哉; 鷹巣 篤志; 坂上 凛; 林 真那; 西崎俊太朗; 宮川靖基; 森龍之介; 門野莉紗; 松本和也; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 ポスター発表
• マウスMII期卵染色体におけるH3K4me3修飾の機能解析  [通常講演]

  鷹巣篤志; 日野敏昭; 三村知也; 梁智華; 伊田ちさと; 宮川靖基; 坂上凜; 門野莉紗; 井上明裕; 西崎俊太朗; 森龍之介; 井橋俊哉; 松本和也; 的場彰悟; 小倉淳郎; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 ポスター発表
• 野生動物細胞核の転写リプログラミング誘導  [通常講演]

  門野莉紗; Christopher Penfold; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 坂上凜; 林真那; 井上明裕; 西崎俊太朗; 宮川靖基; 森龍之介; 松本和也; 安齋政幸; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 口頭発表（一般） 神奈川県足柄下郡湯河原町鍛冶屋 572-1 レクトーレ湯河原
• マウス2細胞期胚におけるLamin B1の一過的な減少が胚発生に及ぼす影響  [通常講演]

  坂上 凜; 田中真仁; 鷹巣篤志; 宮川靖基; 渡邉直子; 島本勇太; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 ポスター発表
• 核内アクチンタンパク質のマウス初期胚における機能  [通常講演]

  宮川靖基; 坂上凜; 眞銅大暉; 坂本裕子; 三島花心; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 林真那; 井上明裕; 門野莉紗; 西崎俊太朗; 森龍之介; 松本和也; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023（ポスター発表） 2023年07月 ポスター発表
• 核内アクチンタンパク質のマウス初期胚における機能  [通常講演]

  宮川靖基; 坂上凜; 眞銅大暉; 坂本裕子; 三島花心; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 林真那; 井上明裕; 門野莉紗; 西崎俊太朗; 森龍之介; 松本和也; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 口頭発表（一般）
• 卵内因子を用いたマウス老化細胞の若返  [通常講演]

  西崎 俊太朗; 井橋俊哉; 森龍之介; 鷹巣篤志; 林真那; 坂上凜; 井上明裕; 宮川靖基; 門野莉紗; 小藪直生; 藤原香凜; 松本和也; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 ポスター発表
• 野生動物細胞核の転写リプログラミング誘導  [通常講演]

  門野莉紗; Christopher Penfold; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 坂上凜; 林真那; 井上明裕; 西崎俊太朗; 宮川靖基; 森龍之介; 松本和也; 安齋政幸; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 ポスター発表 〒259-0313 神奈川県足柄下郡湯河原町鍛冶屋 572-1 レクトーレ湯河原
• 体細胞核移植を用いた老化細胞のAge Reprogramming  [通常講演]

  森龍之介; 西崎俊太朗; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 林真那; 坂上凜; 井上明裕; 門野莉紗; 宮川靖基; 松本和也; 宮本圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 ポスター発表
• ヒト子宮内膜間質細胞の脱落膜化には核内アクチンの重合化が必要である  [通常講演]

  宮本 圭

  文部科学省 科学研究費補助金 新学術領域研究 「全能性プログラム」若手勉強会 2023 2023年07月 ポスター発表
• 非クロマチン核内因子による核機能の制御と胚発生における役割  [招待講演]

  宮本圭

  山口大学医学部産科婦人科 産婦人科セミナー 2022年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
• 哺乳類胚の品質評価へとつながる母性転写産物バイオマーカーの探索  [通常講演]

  井上 明裕; 山本 真理; 山之内 忠幸; 松田 秀雄; 井橋 俊哉; 眞銅 大暉; 鷹巣 篤志; 林 真那; 坂上 凜; 松本 和也; 宮本 圭

  第45回日本分子生物学会 2022年12月 ポスター発表
• マウス初期胚における核骨格タンパク質ラミンの定量的動態解析  [通常講演]

  坂上凜; 田中真己; 眞銅大暉; 宮川靖基; 山本真理; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 林真那; 松本和也; 島本勇太; 宮本圭

  第45回日本分子生物学会 2022年12月 ポスター発表
• 核内F-アクチンを介した胚性ゲノム活性化経路  [通常講演]

  眞銅 大暉; 坂本 裕子; 坂上 凜; 宮川 靖基; 山本 真理; 井橋 俊哉; 鷹巣 篤志; 林 真那; 井上 明裕; 森 龍之介; 崎 俊太朗; 門野 莉沙; 松本 和也; 宮本 圭

  第45回日本分子生物学会 2022年12月 ポスター発表
• 初期胚発生に必須な遺伝子AlyrefおよびGabpb1ノックアウトにおける発生停止機構の解明  [通常講演]

  井橋 俊哉; 森 龍之介; 崎 俊太郎; 中村 岬; 濱中 瑞斗; 加地 正弥; 森 美樹; 今里 佑馬; 山本 真理; 眞銅 大暉; 鷹巣 篤志; 坂上 凛; 安齋 政幸; 松本 和也; 伊川 正人; 宮本 圭

  第45回日本分子生物学会 2022年12月 ポスター発表
• アクチン核⾻格のマウス胚発⽣における役割  [招待講演]

  宮本 圭

  第45回日本分子生物学会 2022年11月 口頭発表（招待・特別）
• Dynamic expression of nucleoskeleton proteins regulates mouse preimplantation development  [招待講演]

  Kei Miyamoto

  The International Symposium "Totipotency and Germ Cell Development" 2022年11月 口頭発表（招待・特別）
• Incomplete activation of developmentally required genes Alyref and Gabpb1 leads to preimplantation arrest in cloned mouse embryos  [通常講演]

  Shunya Ihashi; Mizuto Hamanaka; Masaya Kaji; Ryunosuke Mori; Shuntaro Nishizaki; Miki Mori; Yuma Imasato; Atsushi Takasu; Misaki Nakamura; Kazuya Matsumoto; Masayuki Anzai; Masahito Ikawa; Kei Miyamoto

  The International Symposium "Totipotency and Germ Cell Development" 2022年11月 ポスター発表
• 哺乳類胚の発生能に関連する母体転写産物の同定とその利用  [通常講演]

  井上明裕; 山之内忠幸; 松田秀雄; 山本真理; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 坂上凜; 崎俊太朗; 宮川靖基; 森龍之介; 松本和也; 宮本圭

  新学術・学術変革領域合同 若手の会 2022 2022年11月 ポスター発表
• マウス初期胚におけるLaminの定量的発現動態解析  [通常講演]

  坂上凜; 田中真己; 宮川靖基; 島本勇太; 宮本圭

  新学術・学術変革領域合同 若手の会 2022 2022年11月 口頭発表（一般）
• マウス体細胞核移植胚におけるAlyrefとGabpb1の役割  [通常講演]

  西崎俊太朗; 井橋俊哉; 森龍之介; 山本真理; 眞銅大輝; 林真那; 鷹巣篤志; 坂上凜; 井上明裕; 宮川靖基; 松本和也; 伊川正人; 宮本圭

  新学術・学術変革領域合同 若手の会 2022 2022年11月 ポスター発表
• 全能性獲得に関与するAlyref・Gabpb1遺伝子のマウス初期胚発生における役割  [通常講演]

  森龍之介; 井橋俊哉; 西崎俊太朗; 山本真理; 鷹巣篤志; 坂上凜; 井上明裕; 宮川靖基; 松本和也; 伊川正人; 宮本圭

  新学術・学術変革領域合同 若手の会 2022 2022年11月 ポスター発表
• 受精卵特異的核内F-actinの可視化と機能解析  [通常講演]

  宮川靖基; 坂本裕子; 坂上凛; 眞銅大暉; 井橋俊哉; 鷹巣篤志; 山本真理; 森龍之介; 西崎俊太朗; 井上明裕; 門野莉紗; 松本和也; 宮本圭

  新学術・学術変革領域合同 若手の会 2022 2022年11月 ポスター発表
• ウシ母性転写産物量を指標とした胚の品質評価法の検討  [通常講演]

  井上 明裕; 山之内 忠幸; 松田 秀雄; 山本 真理; 井橋 俊哉; 眞銅 大暉; 鷹巣 篤志; 林 真那; 坂上 凛; 松本 和也; 宮本 圭

  第115回 日本繁殖生物学会大会 2022年09月 ポスター発表
• マウス初期胚における核骨格構造の動態解析  [通常講演]

  坂上 凜; 眞銅 大暉; 坂本 裕子; 山本 真理; 井橋 俊哉; 鷹巣 篤志; 林 真那; 松本 和也; 宮本 圭

  第115回 日本繁殖生物学会大会 2022年09月 ポスター発表
• Single-cell RNA-seq法を用いた体外成熟ヒト卵のトランスクリプトーム解析  [通常講演]

  山本 真理; 武内 大輝; 福井 愛実; 井上 明裕; 前沢 忠志; 西岡 美喜子; 近藤 英司; 池田 智明; 松本 和也; 宮本 圭; 坂上 凜; 林 麻耶; 眞銅 大暉; 鷹巣 篤志; 井橋 俊哉

  第115回 日本繁殖生物学会大会 2022年09月 ポスター発表
• AlyrefおよびGabpb1遺伝子の活性化不全はマウスクローン胚の着床前致死を導く  [通常講演]

  井橋 俊哉; 濱中 瑞斗; 加地 正弥; 森 美樹; 今里 佑馬; 中村 岬; 安齋 政幸; 松本 和也; 伊川 正人; 宮本 圭

  第115回 日本繁殖生物学会大会 2022年09月 口頭発表（一般）
• 体細胞核の全能性獲得に関与する遺伝子の同定と着床前発生における機能  [招待講演]

  井橋 俊哉; 中村 岬; 安齋 政幸; 松本 和也; 伊川 正人; 宮本 圭

  第74回日本細胞生物学会大会 2022年06月 口頭発表（招待・特別）
• Nuclear F-actin for embryonic development and nuclear reprogramming  [招待講演]

  Kei Miyamoto

  1st Nuclear Actin Symposium 2022年05月 口頭発表（招待・特別）
• 体外成熟培養に供試したヒト卵のトランスクリプトーム解析  [通常講演]

  山本真理; 武内 大輝; 福井 愛実; 前沢 忠志; 西岡 美喜; 池田 智; 松本和也; 宮本圭

  第10 回 関西生殖集談会 第54 回 関西アンドロロジーカンファレンス 合同研究会 2022年03月 口頭発表（一般）
• 低侵襲的遺伝子発現解析による卵質の評価  [招待講演]

  宮本圭

  第12回日本がん・生殖医療学会学術集会 2022年02月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
• Reprogramming of gene expression in embryonic development  [招待講演]

  Kei Miyamoto

  Graduate course is on chromatin organization and dynamics during differentiation, Stockholm University 2021年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
• RNAポリメラーゼIIの転写伸長反応が転写リプログラミングの律速段階となる  [通常講演]

  林真那; 辻本佳加理; 鹿喰巧磨; 大石真生; 白水宗; 山本真理; 井橋俊哉; 眞銅大暉; 坂上凜; 松本和也; Robert Grosse; 宮本圭

  第44回日本分子生物学会年会 2021年12月 ポスター発表
• マウス初期胚における核骨格タンパク質の発現動態  [通常講演]

  坂上凜; 眞銅大暉; 坂本裕子; 山本真理; 井橋俊哉; 林真那; 松本和也; 宮本圭

  第44回日本分子生物学会年会 2021年12月 ポスター発表
• 受精卵発生に必須な遺伝子の過剰発現が体細胞核移植胚の発生に及ぼす影響  [通常講演]

  井橋俊哉; 中村岬; 黒田岳; 曽我部桃佳; 濱中瑞斗; 加地正弥; 日下部春奈; 森美樹; 今里佑馬; 松澤由佳; 梶栗尚明; 山本真理; 眞銅大暉; 林 真那; 坂上 凜; 松本和也; 伊川正人; 宮本圭

  第44回日本分子生物学会年会 2021年12月 ポスター発表
• 体外成熟培養ヒト卵のトランスクリプトームプロファイル  [通常講演]

  山本 真理; 武内 大輝; 福井 愛実; 前沢 忠志; 西岡 美喜子; 池田 智明; 松本 和也; 宮本 圭

  第44回日本分子生物学会年会 2021年12月 ポスター発表
• 全能性細胞核の構築や機能に関する研究  [招待講演]

  宮本圭

  2021年度新学術全能性領域会議 2021年11月 口頭発表（招待・特別）
• ヒト卵の成熟過程におけるシングルセル遺伝子発現プロファイリング  [招待講演]

  宮本 圭

  第66回日本生殖医学会学術講演会・総会 2021年11月 口頭発表（招待・特別）
• ノーベル賞受賞者のラボでの研究生活  [招待講演]

  宮本圭

  114 回 日本繁殖生物学会 2021年09月 口頭発表（招待・特別）
• Transcriptional reprogramming of somatic cells derived from an endangered animal using a novel nuclear transfer system  [招待講演]

  冨川 順子; Christopher Penfold; 神谷 拓磨; 日比野; 理沙; 安齋 政幸; 松本 和也; 宮本 圭

  第92回日本動物学会オンライン 米子大会 2021年09月 口頭発表（招待・特別）
• 哺乳動物胚の着床前発生における遺伝子発現リプログラミング機構  [招待講演]

  宮本 圭

  第39回受精着床学会総会・学術講演会 2021年07月 口頭発表（招待・特別）
• 核内アクチンタンパク質による核構造と遺伝子発現の制御  [招待講演]

  宮本圭

  第33回バイオエンジニアリング講演会 2021年06月 口頭発表（招待・特別）
• 卵内因子によるクロマチン構造と転写状態の初期化  [招待講演]

  宮本 圭

  第14回日本エピジェネティクス研究会年会 2021年03月 口頭発表（招待・特別）
• 核内アクチン繊維形成とゲノム機能制御におけるアクチンファミリーArp4の役割  [通常講演]

  上野 佑也; 山崎 祥他; GERHOLD Christia; 山本 浩志; 宮本 圭; 原田 昌彦

  日本農芸化学会2021年度大会 2021年03月 口頭発表（一般）
• ヒト卵の体外成熟過程におけるトランスクリプトーム解析  [通常講演]

  武内大輝; 山本真理; 前沢忠志; 西岡美喜子; 池田智明; 松本和也; 宮本圭

  新学術領域研究『配偶子インテグリティの構築』『全能性プログラム』合同公開シンポジウム2020 2020年12月 ポスター発表
• Visualization of endogenous nuclear F-actin in mouse embryos reveals abnormal actin assembly after somatic cell nuclear transfer  [通常講演]

  眞銅大暉; 井橋俊哉; 坂本裕子; 奥野智美; 冨川順子; 宮本圭

  新学術領域研究『配偶子インテグリティの構築』『全能性プログラム』合同公開シンポジウム2020 2020年12月 ポスター発表
• 体細胞核移植における全能性獲得に関与する遺伝子の機能解析 -Alyref および Gabpb1 の初期胚発生における役割-  [通常講演]

  井橋俊哉; 濱中瑞斗; 加地正弥; 森美樹; 今里佑馬; 日下部春奈; 梶栗尚明; 松澤由佳; 山本真理; 坂本裕子; 辻本佳加理; 笠原喜斗; 眞銅大暉; 松本和也; 伊川正人; 宮本圭

  新学術領域研究『配偶子インテグリティの構築』『全能性プログラム』合同公開シンポジウム2020 2020年12月 ポスター発表
• マウス初期胚における全能性細胞核の構築機構  [招待講演]

  宮本圭

  新学術領域研究『配偶子インテグリティの構築』『全能性プログラム』合同公開シンポジウム2020 2020年12月 口頭発表（招待・特別）
• Gabpb1遺伝子のマウス初期胚発生における役割  [通常講演]

  井橋俊哉; 濱中瑞斗; 加地正弥; 森美樹; 今里佑馬; 日下部春奈; 梶栗尚明; 松澤由佳; 山本真理; 坂本裕子; 辻本佳加理; 笠原喜斗; 眞銅大暉; 松本和也; 伊川正人; 宮本圭

  第43回 日本分子生物学会年会 2020年12月 ポスター発表
• Gabpb1遺伝子のマウス初期胚発生における機能解析  [通常講演]

  井橋俊哉; 濱中瑞斗; 加地正弥; 森美樹; 今里佑馬; 日下部春奈; 梶栗尚明; 松澤由佳; 山本真理; 坂本裕子; 辻本佳加理; 笠原喜斗; 眞銅大暉; 松本和也; 伊川正人; 宮本圭

  第113回 日本繁殖生物学会大会 2020年09月 ポスター発表
• マウス初期胚を用いた体細胞核の転写リプログラミング誘導  [招待講演]

  宮本圭

  第１１３回 日本繁殖生物学会大会 2020年09月 口頭発表（招待・特別） 青葉山新キャンパス 動物生殖科学分野（Web開催） 大会長：種村 健太郎先生（東北大学大学院農学研究科）
  
• マウス初期胚を用いた新規核移植法による直接的な転写リプログラミング誘導  [招待講演]

  宮本圭

  第93回 日本生化学会大会 2020年09月 口頭発表（招待・特別）
• 「サイエンスクエスト そして科学者へ・・・」  [招待講演]

  宮本圭

  和歌山県高等学校生徒科学研究発表会 2019年12月 口頭発表（招待・特別） 和歌山県民文化会館
• 受精卵の全能性を評価する方法の開発に向けて  [通常講演]

  山本 真理; Nicole Cheung; 塚口 智将; 小林 久人; 神尾 明日香; 奥野 智美; 神谷 拓磨; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 坂本 裕子; 笠原 善斗; 眞銅 大暉; 河野 友宏; 松本 和也; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• 核移植における体細胞核の全能性獲得に関与する遺伝子の機能解析  [通常講演]

  井橋 俊哉; 森 美樹; 今里 佑馬; 日下部 春奈; 梶栗 尚明; 松澤 由佳; 加地 正弥; 濱中 瑞斗; 神谷 拓磨; 奥野 智美; 山 本 真理; 越智 浩介; 坂本 裕子; 辻本 佳加理; 笠原 喜斗; 眞銅 大暉; 松橋 珠子; 伊川 正人; 松本 和也; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• マウス初期胚発生における受精卵特異的重合化核アクチンの機能解析  [通常講演]

  奥野 智美; Li Wayne Yang; 波多野 裕; 鷹巣 篤志; 山本 真理; 池田 善貴; Plessner Matthias; 坂本 裕子; 守田 昂太; 郎; 松本 和也; 山縣 一夫; Grosse Robert; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• 細胞周期を停止したマウス初期胚による核リモデリング  [通常講演]

  神谷 拓磨; 西浦 伊織; 奥野 智美; 山本 真理; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 坂本 裕子; 笠原 善斗; 眞銅 大暉; 松橋 珠子; 松本 和也; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• 核内アクチンタンパク質の重合化がマウス初期胚の細胞分裂に及ぼす影響  [通常講演]

  坂本 裕子; 奥野 智美; Li Yang; 山本 真理; 神谷 拓磨; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 笠原 喜斗; 眞銅 大暉; 松 橋 珠子; 松本 和也; Robert Grosse; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• カエル卵母細胞を用いた転写リプログラミング機構の解析  [通常講演]

  辻本 佳加理; 白水 宗; 小林 智輝; 西 満里奈; 辻村 翔子; 神谷 拓磨; 奥野 智美; 山本 真理; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 坂本 裕子; 笠原 喜斗; 眞銅 大暉; 松橋 珠子; 松本 和也; Grosse Robert; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• マウス初期胚発生における受精卵特異的重合化核アクチンの機能解析  [通常講演]

  奥野 智美; Li Wayne Yang; 波多野 裕; 鷹巣 篤志; 山本 真理; 池田 善貴; Matthias Plessner; 坂本 裕子; 守田 昂太郎; 松本 和也; 山縣 一夫; Robert Grosse; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 口頭発表（一般）
• マウス受精卵前核の機能維持における核骨格タンパク質の役割  [招待講演]

  奥野 智美; Yang Wayne Li; 波多野 裕; 鷹巣 篤志; 山本 真理; 池田 善貴; Matthias Plessner; 坂本 裕子; 守田 昂太郎; 松本 和也; 山縣 一夫; Robert Grosse; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 口頭発表（招待・特別）
• マウス受精卵を用いた内在性核内繊維状アクチンの可視化法の検討  [通常講演]

  眞銅 大暉; 坂本 裕子; 奥野 智美; Li Yang; 山本 真理; 神谷 拓磨; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 笠原 喜斗; 松 橋 珠子; 松本 和也; Robert Grosse; 宮本 圭

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• 肉用牛の出荷時の筋肉内脂肪中のオレイン酸含有割合を予測する血中バイオマーカータンパク質の検討  [通常講演]

  越智 浩介; 池上 春香; 松橋 珠子; 邨上 正幸; 山本 真理; 笠原 喜斗; 眞銅 大暉; 宮本 圭; 加藤 博己; 高取 等; 松本 和也

  第42回日本分子生物学会年会 2019年12月 ポスター発表
• 光遺伝学ツールを用いた核アクチン重合化の促進と転写リプログラミングにおけるクロマチンタンパク質の動態  [通常講演]

  辻本佳加理; 白水宗; 小林智輝; 西満里奈; 辻村翔子; 守屋朱香; 國富瑞生; 松橋珠子; 松本和也; Robert Grosse; 宮本圭

  全能性プログラム：デコーディングからデザインへ 若手勉強会 2019年11月 ポスター発表
• マウス初期胚における核内アクチンタンパク質と初期細胞分裂の関係性  [通常講演]

  坂本裕子; 奥野智美; Wayne Yang Li; 眞銅太暉; 鷹巣篤志; 山本真理; 波多野裕; 池田善貴; Matthias Plessner; 守田昂太郎; 松本和也; 山縣一夫; Robert Grosse; 宮本圭

  全能性プログラム：デコーディングからデザインへ 若手勉強会 2019年11月 ポスター発表
• 核移植における全能性獲得に関与する遺伝子の機能解析  [通常講演]

  井橋 俊哉; 濱中瑞斗; 加地正弥; 森美樹; 今里佑馬; 日下部春奈; 梶栗尚明; 松澤由佳; 神谷拓磨; 奥野智美; 山本真理; 越智浩介; 坂本裕子; 辻本佳加理; 笠原喜斗; 松橋珠子; 松本和也; 伊川正人; 宮本圭

  全能性プログラム：デコーディングからデザインへ 若手勉強会 2019年11月 ポスター発表
• 細胞分裂及びDNA複製非依存的新規核移植法による転写リプログラミング  [通常講演]

  神谷拓磨; Christopher A. Penfold; 奥野智美; 山本真理; 越智浩介; 井橋俊哉; 辻本佳加理; 坂本裕子; 松橋珠子; 松本和也; 宮本圭

  全能性プログラム：デコーディングからデザインへ 若手勉強会 2019年11月 ポスター発表
• マウス前核期胚における重合化核アクチンの機能解明に向けて  [通常講演]

  奥野智美; Wayne Yang Li; 波多野裕; 鷹巣篤志; 山本真理; 池田善貴; Matthias Plessner; 坂本裕子; 守田昂太郎; 松本和也; 山縣一夫; Robert Grosse; 宮本圭

  全能性プログラム：デコーディングからデザインへ 若手勉強会 2019年11月 ポスター発表
• 受精卵の全能性に関する母性転写産物の探索  [通常講演]

  山本真理; 宮本圭

  全能性プログラム：デコーディングからデザインへ 若手勉強会 2019年11月 口頭発表（一般）
• 核内アクチン重合化は受精卵前核の機能維持と初期胚発生に必要である  [招待講演]

  宮本圭

  全能性プログラム：デコーディングからデザインへ キックオフシンポジウム 2019年11月 口頭発表（招待・特別）
• 分子マーカーを用いた受精卵の発生能予測  [招待講演]

  宮本圭

  第64回 日本生殖医学会学術講演会・総会 2019年11月 口頭発表（招待・特別）
• 光遺伝学ツールを用いた核アクチン重合化の促進と転写リプログラミングにおけるHP1ファミリータンパク質の動態  [通常講演]

  辻本佳加理; 白水宗; 小林智輝; 西満里奈; 辻村翔子; 神谷拓磨; 奥野智美; 山本真理; 越智浩介; 井橋俊哉; 坂本裕子; 笠原喜斗; 松橋珠子; 松本和也; Robert Grosse; 宮本圭

  第92回日本生化学会大会 2019年09月 ポスター発表 パシフィコ横浜
• 受精卵特異的重合化核アクチンの機能解析  [通常講演]

  奥野智美; Wayne Yang Li; 波多野裕; 鷹巣篤志; 山本真理; 池田善喜; Matthias Plessner; 坂本裕子; 守田昂太郎; 松本和也; 山縣一夫; Robert Grosse; 宮本圭

  第92回日本生化学会大会 2019年09月 口頭発表（一般） パシフィコ横浜
• A novel nucleoskeleton structure in mouse zygotes and its developmental functions  [招待講演]

  宮本圭

  第92回日本生化学会大会 2019年09月 口頭発表（招待・特別）
• 核移植における体細胞核の全能性獲得に関与する遺伝子の探索  [通常講演]

  井橋 俊哉; 森 美樹; 今里 佑馬; 日下部 春奈; 梶栗 尚明; 松澤 由佳; 神谷 拓磨; 奥野 智美; 山本 真理; 越智 浩介; 坂本 裕子; 辻本 佳加理; 笠原 善斗; 松橋 珠子; 松本 和也; 宮本 圭

  第112回日本繁殖生物学会大会 2019年09月 ポスター発表
• 受精卵の発生能を予測するシステムの開発  [通常講演]

  山本 真理; Nicole CHEUNG; 塚口 智将; 小林 久人; 神尾 明日香; 奥野 智美; 神谷 拓磨; 越智 浩介; 井橋 俊也; 辻本 佳加理; 坂本 裕子; 笠原 善斗; 眞銅 大暉; 河野 友宏; 松本 和也; 宮本 圭

  第112回日本繁殖生物学会大会 2019年09月 ポスター発表
• 3種類の化合物の組み合わせがブタ核移植胚の発生能に及ぼす影響  [通常講演]

  岩元 正樹; 矢崎 智子; 井橋 俊哉; 山田 雅保; 宮本 圭

  第112回日本繁殖生物学会大会 2019年09月 ポスター発表
• 受精後の母性タンパク質PIASyの分解は母性から胚性への移行に重要である  [通常講演]

  樋口 智香; 山本 真理; 奥野 智美; 神谷 拓磨; 越智 浩介; 宮本 圭; 松本 和也

  第112回 日本繁殖生物学会大会 2019年09月 口頭発表（一般）
• 受精卵の発生能を予測するシステムの開発について  [通常講演]

  山本真理; Nicole Cheung; 塚口智将; 小林久人; 神尾明日香; 奥野智美; 神谷拓磨; 越智浩介; 井橋俊也; 辻本佳加理; 坂本裕子; 笠原善斗; 眞銅大暉; 河野友宏; 松本和也; 宮本圭

  第３回日本胚移植技術研究会大会（和歌山大会） 2019年08月 口頭発表（一般）
• 2万8千年前のケナガマンモスの筋肉組織と骨髄組織のプロテオーム解析  [通常講演]

  永井 宏平; 宮本 裕史; 安齋 政幸; 東 里香; 西端 智也; 山縣 一夫; 加藤 博己; 宮本 圭; Kolodeznikov Igor I. Protopopov; Albert V. Plotnikov Valerii V; 細井 美彦; 三谷 匡; 松本 和也; 入谷 明

  日本プロテオーム学会2019年大会 2019年07月
• 2万8千年前のケナガマンモス組織から得られたタンパク質の翻訳後修飾の解析  [通常講演]

  西端 智也; 永井 宏平; 山縣 一夫; 宮本 裕史; 安齋 政幸; 加藤 博己; 宮本 圭; 東 里 香; Kolodeznikov Igor; I. Protopopov; Albert V; Plotnikov Valerii V; 細井 美彦; 三谷 匡; 松本 和也; 入谷 明

  日本プロテオーム学会2019年大会 2019年07月
• Novel roles of nuclear actin polymerization in establishing nuclear structures and in embryonic development  [通常講演]

  宮本圭

  19th HFSP Awardees Meeting and 30th anniversary celebration 2019年07月 ポスター発表
• 転写リプログラミングにおけるクロマチン構造変化の階層的理解  [通常講演]

  宮本圭

  第２回クロマチン潜在能領域会議 2019年06月 口頭発表（一般）
• カエル卵母細胞を用いた転写リプログラミング機構の解析  [通常講演]

  辻本佳加理; 白水宗; 小林智輝; 西満里奈; 辻村翔子; 神谷拓磨; 奥野智美; 山本真理; 越智浩介; 井橋俊哉; 坂本裕子; 笠原喜斗; 松橋珠子; 松本和也; Robert Grosse; 宮本圭

  第2回クロマチン潜在能領域 2019年06月 ポスター発表
• マウス受精卵における重合化核アクチンの役割  [通常講演]

  奥野智美; Wayne Yang Li; 波多野裕; 鷹巣篤志; 山本真理; 池田善喜; Matthias Plessner; 坂本裕子; 守田昂太郎; 松本和也; 山縣一夫; Robert Grosse; 宮本圭

  第2回クロマチン潜在能領域会議 2019年06月 ポスター発表
• 核内アクチンタンパク質の重合化がマウス初期胚の細胞分裂に及ぼす影響  [通常講演]

  坂本 裕子; 奥野 智美; Yang Li; 山本 真理; 神谷 拓磨; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 松橋 珠子; 松本 和也; Robert Grosse; 宮本 圭

  第60回日本卵子学会学術集会 2019年05月 口頭発表（一般）
• 低侵襲的に受精卵の発生能を予測する新規システムの開発に向けて  [招待講演]

  宮本圭

  第15回東海ARTカンファレンス 2019年02月 口頭発表（招待・特別）
• 受精卵の全能性を予測するシステムの開発にむけて  [通常講演]

  山本真理; Nicole Cheung; 塚口智将; 小林久人; 神尾明日香; 奥野智美; 神谷拓磨; 越智浩介; 樋口智香; 井橋俊也; 辻本佳加理; 坂本裕子; 河野友宏; 松本和也; 宮本圭

  生物資源ゲノム解析拠点 研究報告会 2019年02月 ポスター発表
• Actin polymerization in reprogramming nuclear structures  [招待講演]

  Kei Miyamoto

  ASCB/EMBO 2018meeting 2018年12月 口頭発表（招待・特別） San Diego Convention Center
• マウス体細胞核移植胚と受精卵の全能性獲得に関わる分子機構  [招待講演]

  宮本圭

  新学術領域研究 成果取りまとめ公開シンポジウム「生殖細胞のエピゲノムダイナミクスとその制御」 2018年12月 京都教育文化センター
• 肉用牛の出荷時の筋肉内脂肪中のオレイン酸含有割合を生体評価する血中バイオマーカータンパク質の検討  [通常講演]

  越智 浩介; 池上 春香; 松橋 珠子; 邨上 正幸; 樋口 智香; 奥野 智美; 神谷 拓磨; 山本 真理; 井橋 俊哉; 坂本 裕子; 辻本 佳加理; 宮本 圭; 永井 宏平; 加藤 博; 高取 等; 松本 和; 近大院生物理工; 近大生物理工; 近大先端研; 鳥取畜試

  第41回日本分子生物学会年会 2018年11月 ポスター発表 パシフィコ横浜
• 核移植における体細胞核の全能性獲得に関与する遺伝子の探索  [通常講演]

  井橋 俊哉; 森 美樹; 今里 佑馬; 日下部 春奈; 梶栗 尚明; 松澤 由佳; 樋口 智香; 神谷 拓磨; 奥野 智美; 山本 真理; 越智 浩介; 坂本 裕子; 辻本 佳加理; 松橋 珠子; 松本 和也; 宮本; 近大; 生物理工; 近大; 先技総研

  第41回日本分子生物学会年会 2018年11月 ポスター発表 パシフィコ横浜
• レトロトランスポゾンMERVLの活性化機構の解析  [通常講演]

  奥野 智美; 山口 壮輝; 樋口 智香; 神谷 拓磨; 山本 真理; 越智 浩介; 西野 亜理紗; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 坂本 裕子; 松橋 珠子; 安齋 政幸; 黒坂 哲; 三谷 匡; 山縣 一夫; 細井 美彦; 松本 和也; 宮本 圭; 近畿大学生物理工学部; 近大先技総

  第41回日本分子生物学会年会 2018年11月 ポスター発表 パシフィコ横浜
• 細胞周期を停止したマウス初期胚による転写リプログラミング  [通常講演]

  神谷 拓磨; 西浦 伊織; 本上 遥; 久米 健太; 樋口 智香; 奥野 智美; 山本 真理; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 坂本 裕子; 松橋 珠子; 細井 美彦; 松本 和也; 宮本 圭; 近畿大学生物理工; 近大先技総

  第41回日本分子生物学会年会 2018年11月 ポスター発表 パシフィコ横浜
• 単一受精卵からの網羅的遺伝子発現解析法の最適化  [通常講演]

  山本 真理; チャン ニコール; 塚口 智将; 小林 久人; 神尾 明日香; 奥野 智美; 神谷 拓磨; 越智 浩介; 樋口 智香; 井橋 俊也; 辻本 佳加理; 坂本 裕子; 河野 友宏; 松本 和也; 宮本 圭; 近大院生物理工; 東農大; 生物資源ゲノムセンタ

  第41回日本分子生物学会年会 2018年11月 ポスター発表 パシフィコ横浜
• 光遺伝学ツールを用いた核アクチン重合化の促進と卵母細胞における転写リプログラミングへの影響  [通常講演]

  辻本 佳加理; 白水 宗; 小林 智輝; 西 満里奈; 辻村 翔子; 樋口 智香; 神谷 拓磨; 奥野 智美; 山本 真理; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 坂本 裕子; 松橋 珠子; 松本 和也; 宮本 圭; 近大生物理工; 近大先技総

  第41回日本分子生物学会年会 2018年11月 ポスター発表 パシフィコ横浜
• Roles of actin family proteins in chromatin and nuclear functions  [通常講演]

  Nanako Machida; Shota Yamazaki; Yusuke Akiyama; Kei Miyamoto; Bertoldo Davide; Christian Heinis; Masahiko Harata

  国際3R+3C ミーティング（Replication Recombination Repair + Cell Cycle Chromosome Chromatin） 2018年11月 ポスター発表 金沢市文化ホール 開催責任者：白髭克彦（東京大学分子細胞生物学研究所・教授）
  
• 初期胚特異的レトロトランスポゾンMERVLの活性化機構の解析  [通常講演]

  奥野 智美; 樋口 智香; 神谷 拓磨; 山本 真理; 越智 浩介; 西野 亜理紗; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 松橋 珠子; 安齋 政幸; 黒坂 哲; 三谷 匡; 山縣 一夫; 細井 美彦; 松本 和也; 宮本 圭

  第111回 日本繁殖生物学会大会 2018年09月 ポスター発表
• 細胞分裂及びDNA複製非依存的リプログラミングシステムの構築  [通常講演]

  神谷 拓磨; 本上 遥; 久米 健太; 樋口 智香; 奥野 智美; 山本 真理; 越智 浩介; 井橋 俊哉; 辻本 佳加理; 松橋 珠子; 細井 美彦; 松本 和也; 宮本 圭

  第111回 日本繁殖生物学会大会 2018年09月 ポスター発表
• 受精後にユビキチン・プロテアソーム系による分解が必要な母性タンパク質の同定  [通常講演]

  樋口 智香; 奥野 智美; 神谷 拓磨; 山本 真理; 越智 浩介; 宮本 圭; 松本 和也

  第111回 日本繁殖生物学会大会 2018年09月 口頭発表（一般）
• Nuclear actin polymerization in reprogramming nuclear structures  [招待講演]

  宮本圭

  国立遺伝学研究所（セミナー） 2018年09月
• DNA複製非依存的リプログラミングシステムの構築（A novel reprogramming system that does not require DNA replication）  [通常講演]

  神谷拓磨; 本上遥; 久米健太; 山口壮輝; 守田昂太郎; 樋口智香; 奥野智美; 山縣一夫; 細井美彦; 松本和也; 宮本圭

  2017年度生命科学系学会合同年次大会 2017年12月
• 初期胚特異的レトロトランスポゾンMERVLの活性化に伴う核内変化  [通常講演]

  奥野智美; 山口壮輝; 濱田歩花; 竹林真理愛; 守田昂太郎; 樋口智香; 神谷拓磨; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; Jerome Jullien; 松本和也; 宮本圭

  2017年度生命科学系学会合同年次大会 2017年12月
• Roles of nuclear actin in mouse embryonic development  [招待講演]

  宮本圭

  2017年度生命科学系学会合同年次大会（ConBio2017） 2017年12月
• Nuclear actin polymerization in mouse embryonic development  [招待講演]

  宮本圭

  ASCB/EMBO2017meeting 2017年12月
• 核アクチンのマウス初期胚発生における役割  [通常講演]

  守田昂太郎; 鷹巣篤志; 波多野裕; 簾新智; プレッスナーマティアス; 松本和也; 山縣一夫; グロッセロバート; 宮本圭

  第40回日本分子生物学会年会 2017年12月
• 核の初期化とマウス初期胚発生における核アクチンの役割  [招待講演]

  宮本圭

  新学術領域研究・第5回公開シンポジウム 2017年11月
• Roles of nuclear actin in nuclear reprogramming and mouse embryonic development  [通常講演]

  Atsushi Takasu; Kohtaro Morita; Yu Hatano; Yang Li; Tomoki Kobayashi; Marina Nishi; Shoko Tsujimura; Shinji Misu; Matthias Plessner; Kazuya Matsumoto; Robert Grosse; Kazuo Yamagata; Kei Miyamoto

  第5回公開シンポジウム 生殖細胞のエピゲノムダイナミクスとその制御 2017年11月
• クローン動物から再生医療へ～細胞の初期化がもたらす未来～  [招待講演]

  宮本圭

  平成29年度中央区民カレッジ 2017年10月
• Methylation of arginine 2 in histone H3.3 is important for minor zygotic genome activation in mouse pronuclear embryos  [通常講演]

  KohtaroMorita; Chika Higuchi; SokiYamaguchi; Tomomi Okuno; Takuma Kamiya; Tamako Matsuhashi; KoheiNagai; Masayuki Anzai; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  Histone variants: Molecular functions in health and disease Biomedical Center (BMC) 2017年09月
• Roles of nuclear actin in nuclear reprogramming and mouse embryonic development  [招待講演]

  宮本圭

  HMGU-Japan Epigenetics and Chromatin Symposium 2017年09月
• Methylation of arginine 2 in histone H3.3 is important for minor zygotic genome activation in mouse pronuclear embryos  [通常講演]

  KohtaroMorita; Chika Higuchi; SokiYamaguchi; Tomomi Okuno; Takuma Kamiya; Tamako Matsuhashi; KoheiNagai; Masayuki Anzai; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  1st München-Japan Mini Symposium 2017年09月
• Involvement of H3R2me2s in mouse preimplantation development.  [通常講演]

  Kohtaro Morita; Chika Higuchi; Soki Yamaguchi; Tamako Matsuhashi; Kouhei Nagai; Masayuki Anzai; Hiromi Kato; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  Fourth World Congress of Reproductive Biology (WCRB2017) 2017年09月
• Proper degradation of a maternal protein during maternal-to-zygotic transition is important for normal development.  [通常講演]

  Chika Higuchi; Kohtaro Morita; Soki Yamaguchi; Tamako Matsuhashi; Kohei Nagai; Masayuki Anzai; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  Fourth World Congress of Reproductive Biology 2017年09月
• Open chromatin configuration at primed promoters is formed during embryogenesis and accelerates transcriptional activation during differentiation and nuclear reprogramming  [通常講演]

  宮本圭

  EMBO Conference The Nucleosome:From Atoms to Genomes 2017年08月
• マウス初期胚発生の進行に重要な受精後に分解される母性タンパク質の探索  [通常講演]

  樋口智香; 守田昂太郎; 山口壮輝; 奥野智美; 神谷拓磨; 松橋珠子; 永井宏平; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  新学術領域「生殖細胞のエピゲノムダイナミクスとその制御」3領域合同若手勉強会 2017年06月
• 受精後のユビキチン・プロテアソーム系による母性タンパク質の分解はマウス初期胚発生に重要である  [通常講演]

  樋口 智香; 守田 昂太郎; 山口 壮輝; 松橋 珠子; 永井 宏平; 安齋 政幸; 山縣 一夫; 細井 美彦; 宮本 圭; 松本 和也

  第58回日本卵子学会 2017年06月
• マウス初期胚発生過程におけるH3R2me2s の役割  [通常講演]

  守田 昂太郎; 樋口 智香; 山口 壮輝; 松橋 珠子; 永井 宏平; 安齋 政幸; 加藤 博己; 山縣 一夫; 細井 美彦; 宮本 圭; 松本 和也

  第58回日本卵子学会 2017年06月
• ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤が異種間核移植胚の発生に与える影響  [通常講演]

  東里香; 村井仁志; 小笠原里奈; 小木曽力; 鷲津朱理; 宮本圭; 宮下実; 松本和也; 細井美彦; 安齋政幸

  第64回日本実験動物学会総会 2017年05月
• クローン動物がもたらした可能性  [招待講演]

  宮本圭

  平成29年度大阪府高等学校生物教育研究会 2017年05月
• Efficient nuclear reprogramming of somatic cells towards totipotency is supported by synergistic effects of small molecules  [招待講演]

  K. Miyamoto; Y. Tajima; K. Yoshida; M. Oikawa; R. Azuma; M. Mori; Y. Imasato; G.E. Allen; T. Tsujikawa; T. Tsukaguchi; C.R. Bradshaw; J. Jullien; K. Yamagata; K. Matsumoto; M. Anzai; H. Imai; J.B. Gurdon; M. Yamada

  第50回 日本発生生物学会 2017年05月
• HVJ Envelope Cell Fusion kit を用いた異属間体細胞核移植操作による再構築卵子の作製  [通常講演]

  東里香; 村井仁志; 小笠原里奈; 小木曽力; 鷲津朱理; 宮下実; 宮本圭; 細井美彦; 安齋政幸

  日本実験動物技術者協会関東支部第42回懇話会 2017年03月
• Nuclear actin in the regulation of transcription and nuclear structure  [招待講演]

  宮本圭

  Human Frontier Science Program Kick-off Symposium 2017年01月 口頭発表（招待・特別）
• 野生マウス由来線維芽細胞を用いた不活化ウイルス膜タンパク質による体細胞核移植法の開発  [通常講演]

  東里香; 村井仁志; 小橋朱里; 折杉卓哉; 小笠原里奈; 小木曽力; 鷲津朱理; 宮下実; 宮本圭; 細井美彦; 安齋政幸

  第39回日本分子生物学会年会 2016年12月
• Mechanisms of nuclear reprogramming in eggs and oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  アブドラ王立科学技術大学 2016年11月
• Mechanisms of nuclear reprogramming in eggs and oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  ニューヨーク大学アブダビ校 2016年11月
• 体細胞の全能性獲得に関わる分子機構「生殖細胞のエピゲノムダイナミクスとその制御-ステムセルエイジングから解明する疾患原理.卵と初期発生」  [招待講演]

  宮本圭

  新学術領域研究第4回公開シンポジウム 2016年11月
• 黒毛和種去勢牛の枝肉成績と関連する血清中バイオマーカー候補マイクロRNA の探索  [通常講演]

  松橋珠子; 池上春香; 森本 学; 永井宏平; 山口壮輝; 塚口智将; 樋口智香; 守田昂太郎; 宮本 圭; 坂口慎一; 松本和也

  関西畜産学会第66回大会 2016年10月
• 肥育期間中の黒毛和種牛の血清中バイオマーカー候補タンパク質の動態と出荷時の枝肉形質の相関性の検討  [通常講演]

  池上春香; 松橋珠子; 森本 学; 永井宏平; 山口壮輝; 塚口智将; 樋口智香; 守田昂太郎; 宮本 圭; 坂口慎一; 松本和也

  関西畜産学会第66回大会 2016年10月
• クローン動物がもたらした可能性「ノーベル賞の中の繁殖生物学」  [招待講演]

  宮本圭

  第109回日本繁殖生物学会大会市民公開講座 2016年09月
• 受精卵の全能性を評価する新手法開発の取組み  [通常講演]

  塚口智将; Nicole Chung; 小林久人; 神尾明日香; 守田昂太郎; 樋口智香; 山口壮輝; 河野友宏; 松本和也; 宮本圭

  生物資源ゲノム解析拠点シンポジウム、東京農業大学 2016年09月
• The improved culture condition for mouse nuclear transfer embryos enables highly efficient nuclear reprogramming  [招待講演]

  K. Miyamoto; Y. Tajima; K. Yoshida; T. Tsukaguchi; C.R. Bradshaw; G.E. Allen; M. Mori; Y. Imazato; J. Jullien; K. Matsumoto; H. Imai; J.B. Gurdon; M. Yamada

  The 3rd China-Japan-Korea reproduction meeting 2016年08月
• アフリカツメガエル卵母細胞を用いたリプログラミングとクロマチン動構造の解析  [招待講演]

  宮本圭

  次世代両生類研究会第二回会合 2016年08月
• 受精卵の全能性を評価する新手法開発の取組み  [通常講演]

  塚口智将; Nicole Chung; 小林久人; 神尾明日香; 守田昂太郎; 樋口智香; 山口壮輝; 河野友宏; 松本和也; 宮本圭

  新学術領域「生殖細胞のエピゲノムダイナミクスとその制御」合同若手勉強会2016 2016年07月
• マウス2細胞期胚特異的レトロトランスポゾンの発現制御機構の解明に向けて  [通常講演]

  山口壮輝; 濱田歩花; 竹林真理愛; 守田昂太郎; 樋口智香; 塚口智将; 細井美彦; 山縣一夫; 松本和也; 宮本圭

  新学術領域「動的クロマチン構造と機能」クロマチン動構造ワークショップ 2016年07月
• Dynamic expression of PRMT5 and histone H3 symmetrically dimethylated at arginine 8 in mouse embryos during the 1-cell stage  [通常講演]

  Tomomasa Tsukaguchi; Kohtaro Morita; Chika Higuchi; Sho Uchibori; Tasuku Mitani; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  International Symposium on the Future of Nuclear Transfer and Nuclear Reprogramming 2016年03月
• The role of Prdx in reducing H2O2 in pronuclei of mouse zygotes. International Symposium on the Future of Nuclear Transfer and Nuclear Reprogramming  [通常講演]

  Kohtaro Morita; Mikiko Tokoro; Chika Higuchi; Sho Uchibori; Tomomasa Tsukaguchi; Kohei Nagai; Masayuki Anzai; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  International Symposium on the Future of Nuclear Transfer and Nuclear Reprogramming 2016年03月
• The ubiquitin-proteasome system which modulates the proper regulation of the onset of zygotic genome activation is involved in full term development of mice.  [通常講演]

  Chika Higuchi; Natsumi Shimizu; Kohtaro Morita; Sho Uchibori; Tomomasa Tsukaguchi; Kohei Nagai; Masayuki Anzai; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  International Symposium on the Future of Nuclear Transfer and Nuclear Reprogramming 2016年03月
• Dynamic expression of PRMT5 and histone H3 symmetrically dimethylated at arginine 8 in mouse embryos during the 1-cell stage  [通常講演]

  Tomomasa Tsukaguchi; Kohtaro Morita; Chika Higuchi; Sho Uchibori; Tasuku Mitani; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  International Symposium on Epigenome Dynamics and Regulation in Germ Cells 2016年02月
• Peroxiredoxins reduce hydrogen peroxide in pronuclei of mouse zygotes  [通常講演]

  Kohtaro Morita; Mikiko Tokoro; Chika Higuchi; Sho Uchibori; Tomomasa Tsukaguchi; Kohei Nagai; Masayuki Anzai; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  International Symposium on Epigenome Dynamics and Regulation in Germ Cells 2016年02月
• The proper regulation of the onset of zygotic genome activation via ubiquitin-proteasome system is involved in full term development of mice  [通常講演]

  Chika Higuchi; Natsumi Shimizu; Kohtaro Morita; Sho Uchibori; Tomomasa Tsukaguchi; Kohei Nagai; Masayuki Anzai; Kazuo Yamagata; Yoshihiko Hosoi; Kei Miyamoto; Kazuya Matsumoto

  International Symposium on Epigenome Dynamics and Regulation in Germ Cells 2016年02月
• Reprogramming of somatic nuclei towards totipotency is greatly facilitated by small molecules through epigenetic alterations  [招待講演]

  K. Miyamoto; Y. Tajima; K. Yoshida; M. Oikawa; T. Tsukaguchi; C.R. Bradshaw; G.E. Allen; J. Jullien; K. Matsumoto; H. Imai; J.B. Gurdon; M. Yamada

  International Symposium on Epigenome Dynamics and Regulation in Germ Cells 2016年02月
• 卵細胞における体細胞核の階層的クロマチン構造の変化と転写リプログラミングにおける役割  [招待講演]

  宮本圭; ジェローム・ジュリアン; ビンセント・パスク; ジョージ・アレン; チャールズ・ブラッドシャー; ジョン・ガードン

  BMB2015 2015年12月
• PRMT5及びヒストンH3R8対称性ジメチル化は受精後の胚においてその局在が変化する  [通常講演]

  塚口智将; 守田昂太郎; 樋口智香; 内堀翔; 三谷匡; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  第38回日本分子生物学会年会第88回日本生化学会大会合同大会 2015年12月
• Peroxiredoxinはマウス受精卵の核内で酸化ストレス軽減に関与している  [通常講演]

  守田昂太郎; 野老美紀子; 樋口智香; 内堀翔; 塚口智将; 永井宏平; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  第38回日本分子生物学会 2015年12月
• マウス初期胚においてユビキチン・プロテアソーム系は胚性ゲノム活性化の開始を制御し、その後の産仔への発生に関与する  [通常講演]

  樋口智香; 清水なつみ; 守田昂太郎; 内堀翔; 塚口智将; 永井宏平; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  第38回日本分子生物学会年会 2015年12月
• 還元型コエンザイムQ10はマウス体外老化卵母細胞において酸化的修飾タンパク質量の減少を導き、初期胚発生を改善する  [通常講演]

  内堀翔; 樋口智香; 守田昂太郎; 塚口智将; 安齋政幸; 山縣 一夫; 細井 美彦; 宮本 圭; 松本 和也

  第33回日本受精着床学会学術講演会 2015年11月
• 初期胚発生及びリプログラミングにともなうオープンクロマチン構造の変化と転写との関係  [招待講演]

  宮本圭; G.E. Allen; C.R. Bradshaw; J.B. Gurdon

  第108回日本繁殖生物学会 2015年09月
• PRMT5及びヒストンH3R8対称性ジメチル化は受精後の胚においてその局在が変化する  [通常講演]

  塚口智将; 守田昂太郎; 樋口智香; 内堀翔; 三谷匡; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  第108回日本繁殖生物学会大会 2015年09月
• コエンザイムQ10がマウス体外老化卵母細胞の受精とその後の発生に及ぼす影響  [通常講演]

  内堀翔; 樋口智香; 守田昂太郎; 塚口智将; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  第108回日本繁殖生物学会大会 2015年09月
• マウス前核期胚の核内においてPeroxiredoxin（Prdx）が過酸化水素の消去に関与する  [通常講演]

  守田昂太郎; 野老美紀子; 樋口智香; 内堀翔; 塚口智将; 永井宏平; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  第108回日本繁殖生物学会大会 2015年09月
• マウス胚におけるプロテアソーム系の一過性の阻害は胚性ゲノム活性化の開始を遅延し、産仔への発生を損なう  [通常講演]

  樋口智香; 清水なつみ; 守田昂太郎; 内堀翔; 塚口智将; 永井宏平; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也

  第108回日本繁殖生物学会大会 2015年09月
• アフリカツメガエル卵母細胞を用いたリプログラミング機構の解明  [招待講演]

  宮本圭

  次世代両生類研究会第一回会合 2015年08月
• Genome-wide analysis of transcription-associated open chromatin regions during embryonic development and nuclear reprogramming  [通常講演]

  K. Miyamoto; G.E. Allen; C.R. Bradshaw; J.B. Gurdon

  International Symposium on Chromatin Structure, Dynamics and Function 2015年08月
• マウス体細胞核の全能性獲得に関与する分子機構  [招待講演]

  宮本圭

  第４回発生工学研究センターセミナー 2015年08月
• 初期胚発生及びリプログラミングにともなうオープンクロマチン構造の変化と転写との関係  [招待講演]

  宮本圭

  和歌山県立医科大学 2015年07月
• Mechanisms of transcriptional reprogramming in oocytes and eggs; nuclear actin and actin-binding proteins as key players  [招待講演]

  宮本圭

  Protein Research (IPR) seminar “Nuclear organization and actin-dependent mechanisms in genome stability”, 2015年05月
• 初期胚発生及びリプログラミングに伴う網羅的オープンクロマチン解析  [招待講演]

  K. Miyamoto; G.E. Allen; C.R. Bradshaw; J.B. Gurdon

  第60回日本生殖医学会学術講演会 2015年04月
• Mechanisms of nuclear reprogramming in eggs and oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  The 78th of Stem Cell Biology and Regenerative Medicine Forum 2015年03月
• Genome-wide analysis of open chromatin regions during early embryonic development and nuclear reprogramming  [通常講演]

  K. Miyamoto; G.E. Allen; C.R. Bradshaw; M. Teperek; J.B. Gurdon

  The 1st Gurdon Institute Post-doc Association symposium 2014年11月
• Mechanisms of transcriptional reprogramming in oocytes and eggs; nuclear actin and actin-binding proteins as key players  [招待講演]

  宮本圭

  BPC seminar 2014年11月
• Nucleosome positioning during transcriptional reprogramming in oocytes  [招待講演]

  K. Miyamoto; G.E. Allen; C.R Bradshaw

  The 87th Annual Meeting of the Japanese Biochemical Society (日本生化学学会), 2014年10月
• 卵子及び卵母細胞におけるリプログラミング機構  [招待講演]

  宮本圭

  The 123rd RIKEN BRC seminar 2014年10月
• 卵子及び卵母細胞におけるリプログラミング機構  [招待講演]

  宮本圭

  九州大学 2014年10月
• Transcriptional Reprogramming of Sperm and Somatic Nuclei in Xenopus Laevis Oocytes and Eggs  [招待講演]

  宮本圭

  The 8th NIBB International Practical Course and The 3rd NIBB-TLL-DBS/NUS Joint International Practical Course 2014年09月
• Reprogramming of sperm and somatic nuclei in oocytes and eggs  [招待講演]

  宮本圭

  FIRM (Future Investigators of Regenerative Medicine) Symposium, 2014年09月
• Transcriptional reprogramming of mammalian nuclei by maternal factors  [招待講演]

  宮本圭

  King’s College London 2014年04月
• Transcriptional reprogramming of mammalian nuclei by maternal factors  [招待講演]

  宮本圭

  Centre for Genomic Regulation (CRG) 2014年02月
• Transcriptional reprogramming of mammalian nuclei by maternal factors  [招待講演]

  宮本圭

  広島大学 2013年12月
• Transcriptional reprogramming of mammalian nuclei by maternal factors  [招待講演]

  宮本圭

  名古屋大学 2013年12月
• Transcriptional reprogramming of mammalian nuclei by maternal factors  [招待講演]

  宮本圭

  Chromatin Dynamics Symposium 2013年12月
• 核の初期化と胚発生における核アクチンと核アクチン結合タンパク質―胚性遺伝子の転写制御における重要な役割に関して  [招待講演]

  宮本圭

  第36回日本分子生物学会 2013年12月
• Nuclear actin and nuclear actin-binding protein as new players in embryonic development and reprogramming  [招待講演]

  宮本圭

  Developmental Biology Seminar Series, University of Cambridge 2013年11月
• Mechanisms of nuclear reprogramming by eggs and oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  理化学研究所 2012年12月
• The mechanisms of nuclear reprogramming by eggs and oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  Experimental Animals 2012年06月
• Nuclear WAVE1 is necessary for transcriptional reprogramming by Xenopus eggs and oocytes  [通常講演]

  K. Miyamoto; J.B. Gurdon

  International Society for Stem Cell Research (ISSCR) Meeting 2012年06月
• Mechanisms of nuclear reprogramming by eggs and oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  Stem Cells & Bioprocessing Europe 2012年06月
• WAVE1 is required for transcriptional reprogramming by Xenopus eggs and oocytes  [通常講演]

  K. Miyamoto; J.B. Gurdon

  British Society for Cell Biology (BSCB), British Society for Developmental Biology (BSDB) and Japanese Society for Developmental Biologists (JSDB) Joint Spring Meeting 2012年04月
• Mechanisms of nuclear reprogramming by eggs and oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  東北大学 2011年12月
• Nuclear actin in transcriptional reprogramming by Xenopus laevis oocytes  [招待講演]

  宮本圭

  The WGF symposium “Actin and actin-associated proteins from gene to polysomes” 2011年09月
• Nuclear actin polymerization is required for transcriptional reprogramming of Oct4 by oocytes  [通常講演]

  K. Miyamoto; V. Pasque; J. Jullien; J.B. Gurdon

  1st annual Cambridge Stem Cell international symposium: Pluripotency and Development 2011年07月
• Identification of reprogramming factors in oocytes by a novel screening method  [通常講演]

  K. Miyamoto; J.B. Gurdon

  BSCB and BSDB Joint Spring Meeting 2010年04月
• Establishment of novel systems for unraveling reprogramming  [招待講演]

  宮本圭

  近畿大学 2010年02月
• Reprogramming in the oocyte cell-free system  [招待講演]

  宮本圭

  近畿大学 2009年04月
• Mammalian oocyte extracts induce chromatin remodeling and dedifferentiation of somatic cells, but do not global demethylation  [通常講演]

  K. Miyamoto; T. Tsukiyama; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  International Congress on Animal Reproduction (ICAR) 2008年07月
• Reprogramming of somatic cells in cell-free extracts from mammalian oocytes and identification of reprogramming-related proteins  [招待講演]

  宮本圭

  New Bolton Center; University of Pennsylvania 2008年06月
• Reversible permeabilization of mammalian somatic cells treated with digitonin for reprogramming and dedifferentiation by Xenopus cell-free system  [通常講演]

  K. Miyamoto; T. Yamashita; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  ISSCR 2008年06月
• DNA demethylation associated with nuclear reprogramming of the somatic cell genome in cell-free extracts from mammalian oocytes  [通常講演]

  K. Miyamoto; T. Tsukiyama; Y. Yang; N. Li; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  Society for the Study of Reproduction (SSR) 2008年05月
• Differential nuclear reprogramming of somatic cells by porcine germinal vesicle and metaphase II oocyte extracts  [通常講演]

  K. Miyamoto; T. Tsukiyama; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  Asian Reproductive Biotechnology Society (ARBS) 2007年11月
• Nuclear reprogramming of porcine cells and their use as donor cell for nuclear transfer after treatment in Xenopus egg extracts  [通常講演]

  K. Miyamoto; M. Ohnuki; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  The International Embryo Transfer Society (IETS) Meeting 2007年01月
• Reprogramming of intact and permeabilized mammalian somatic cells by Xenopus egg extract  [通常講演]

  K. Miyamoto; M. Ohnuki; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  ARBS 2006年11月
• Nuclear reprogramming of porcine fibroblast cells by Xenopus egg extracts  [通常講演]

  K. Miyamoto; Y. Nagao; N. Minami; M. Yamada; K. Ohsumi; H. Imai

  IETS Meeting 2006年01月
• Imai. Reprogramming events of porcine fibroblast cells in Xenopus egg extracts  [通常講演]

  K. Miyamoto; T. Furusawa; T. Tokunaga; Y. Nagao; N. Minami; M. Yamada; K. Ohsumi; H. Imai

  International Symposium on Germ Cells, Epigenetics, Reprogramming and Embryonic Stem Cells 2005年11月
• Cell cycle synchronization of donor cells at G1 phase and developmental ability of nuclear transfer embryos in miniature pigs  [通常講演]

  K. Miyamoto; Y. Hoshino; Y. Nagao; N. Minami; M. Yamada; H. Imai

  IETS Meeting 2005年

MISC

• 受胎率向上に向けた早期胚質評価

  宮本圭 THE NAITO FOUNDATION REPORT 内藤財団時報 第112号 (112) 1 -135 2023年09月 [招待有り]
  
• 生殖補助医療の発展にむけた着床前胚発生過程の理解

  井上明裕; 宮本圭 Medical Science Digest 9月号 49 (10) 36 -39 2023年09月 [招待有り]
  
• 体外成熟培養に供試したヒト卵のトランスクリプトーム解析

  山本 真理; 武内 大輝; 福井 愛実; 前沢 忠志; 西岡 美喜子; 池田 智明; 松本 和也; 宮本 圭 日本生殖医学会雑誌 67 (3) 134 -134 2022年07月
• Dialogue between Young Leaders and Nobel Laureates

  Kei Miyamoto 18th Annual Meeting of STS forum 2021年09月 [招待有り]
  
• 卵子の秘めた力に魅せられて

  宮本圭 日本学士院ニュースレター 27 9 2021年04月
• ヒト卵の成熟過程におけるシングルセル遺伝子発現プロファイリング

  宮本圭; 武内大輝; 武内大輝; 山本真理; 福井愛実; 前沢忠志; 前沢忠志; 西岡美喜子; 西岡美喜子; 西岡美喜子; 池田智明; 池田智明; 池田智明; 松本和也 日本生殖医学会雑誌 66 (4) 2021年
• A nuclear role for actin polymerization in early embryonic development

  Human Frontier Science Program 2020年08月
• Nuclear reprogramming:From one cell type to another

  宮本圭 Research Outreach (109) 14 -17 2019年08月 [招待有り]
  
• 核内アクチンタンパク質の重合化がマウス初期胚の細胞分裂に及ぼす影響

  坂本裕子; 奥野智美; LI Yang; 山本真理; 神谷拓磨; 越智浩介; 井橋俊哉; 辻本佳加理; 松橋珠子; 松本和也; GROSSE Robert; 宮本圭 Journal of Mammalian Ova Research 36 (1) S49 2019年04月
• 2万8千年前のケナガマンモスの筋肉組織と骨髄組織のプロテオーム解析

  永井宏平; 宮本裕史; 安齋政幸; 東里香; 西端智也; 山縣一夫; 加藤博己; 宮本圭; KOLODEZNIKOV Igor I.; PROTOPOPOV Albert V.; PLOTNIKOV Valerii V.; 細井美彦; 三谷匡; 松本和也; 入谷明 日本プロテオーム学会大会プログラム・抄録集 2019 2019年
• 2万8千年前のケナガマンモス組織から得られたタンパク質の翻訳後修飾の解析

  西端智也; 永井宏平; 山縣一夫; 宮本裕史; 安齋政幸; 加藤博己; 宮本圭; 東里香; KOLODEZNIKOV Igor I.; PROTOPOPOV Albert V.; PLOTNIKOV Valerii V.; 細井美彦; 三谷匡; 松本和也; 入谷明 日本プロテオーム学会大会プログラム・抄録集 2019 2019年
• H3R2me2sは胚性ゲノムの活性化及び初期胚発生に重要である

  守田昂太郎; 樋口智香; 安齋政幸; 松橋珠子; 黒坂哲; 加藤博己; 三谷匡; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也 日本実験動物学会総会講演要旨集(Web) 66th 2019年
• 核移植における体細胞核の全能性獲得に関与する遺伝子の探索

  井橋 俊哉; 越智 浩介; 坂本 裕子; 辻本 佳加理; 笠原 善斗; 松橋 珠子; 松本 和也; 宮本 圭; 森 美樹; 今里 佑馬; 日下部 春奈; 梶栗 尚明; 松澤 由佳; 神谷 拓磨; 奥野 智美; 山本 真理 日本繁殖生物学会 講演要旨集 112 (0) P -98-P-98 2019年
• 初期胚特異的レトロトランスポゾンMERVLの活性化機構の解析

  奥野智美; 樋口智香; 神谷拓磨; 山本真理; 越智浩介; 西野亜理紗; 井橋俊哉; 辻本佳加理; 松橋珠子; 安齋政幸; 黒坂哲; 三谷匡; 山縣一夫; 細井美彦; 松本和也; 宮本圭 Journal of Reproduction and Development 64 (Suppl Japanese Issue) j125 -70-P-70 2018年09月
• 細胞分裂及びDNA複製非依存的リプログラミングシステムの構築

  神谷拓磨; 本上遥; 久米健太; 樋口智香; 奥野智美; 山本真理; 越智浩介; 井橋俊哉; 辻本佳加理; 松橋珠子; 細井美彦; 松本和也; 宮本圭 Journal of Reproduction and Development 64 (Suppl Japanese Issue) j117 -54-P-54 2018年09月
• 畜産領域へのリキッドバイオプシーの展開 2:牛の枝肉成績を肥育中に予測する血清バイオマーカータンパク質の探索

  松橋珠子; 池上春香; 越智浩介; 大林賢伍; 佐野文美; 森隆史; 本廣多胤; 奥野智美; 神谷拓磨; 永井宏平; 宮本圭; 吉廣卓哉; 坂口慎一; 松本和也 日本畜産学会大会講演要旨 124th 184 2018年03月
• レトロトランスポゾンMERVLの活性化機構の解析

  奥野智美; 山口壮輝; 樋口智香; 神谷拓磨; 山本真理; 越智浩介; 西野亜理紗; 井橋俊哉; 辻本佳加理; 坂本裕子; 松橋珠子; 安齋政幸; 黒坂哲; 三谷匡; 山縣一夫; 細井美彦; 松本和也; 宮本圭 日本分子生物学会年会プログラム・要旨集(Web) 41st ROMBUNNO.2P‐0413 (WEB ONLY) 2018年
• 核アクチンのマウス初期胚発生における役割

  守田昂太郎; 鷹巣篤志; 波多野裕; 簾新智; プレッスナー マティアス; 松本和也; 山縣一夫; グロッセ ロバート; 宮本圭 第40回日本分子生物学会 2017年12月
• 動物におけるリプログラミング現象の解明から、細胞初期化の要素を特定する〜

  宮本圭 Top Researchers 2017年09月 [招待有り]
  
• Efficient nuclear reprogramming of somatic cells towards totipotency is supported by synergistic effects of small molecules.

  K. Miyamoto; Y. Tajima; K. Yoshida; M. Oikawa; R. Azuma; M. Mori; Y. Imasato; G.E. Allen; T. Tsujikawa; T. Tsukaguchi; C.R. Bradshaw; J. Jullien; K. Yamagata; K. Matsumoto; M. Anzai; H. Imai; J.B. Gurdon; M. Yamada the 50th annual meeting of Japan Society of Developmental Biologists 2017年05月 [査読有り][招待有り]
  
• 受精後のユビキチン・プロテアソーム系による母性タンパク質の分解はマウス初期胚発生に重要である

  樋口智香; 守田昂太郎; 山口壮輝; 松橋珠子; 永井宏平; 安齋政幸; 安齋政幸; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也 日本卵子学会誌 2 (1) S48 -S48 2017年04月
• マウス初期胚発生過程におけるH3R2me2sの役割

  守田昂太郎; 樋口智香; 山口壮輝; 松橋珠子; 松橋珠子; 永井宏平; 安齋政幸; 安齋政幸; 加藤博巳; 加藤博巳; 山縣一夫; 細井美彦; 宮本圭; 松本和也 日本卵子学会誌 2 (1) S47 -S47 2017年04月
• The improved culture condition for mouse nuclear transfer embryos enables highly efficient nuclear reprogramming.

  K. Miyamoto; Y. Tajima; K. Yoshida; T. Tsukaguchi; C.R. Bradshaw; G.E. Allen; M. Mori; Y. Imazato; J. Jullien; K. Matsumoto; H. Imai; J.B. Gurdon; M. Yamada The 3rd China-Japan-Korea reproduction meeting 2016年08月 [査読有り][招待有り]
  
• Reprogramming of somatic nuclei towards totipotency is greatly facilitated by small molecules through epigenetic alterations

  Kei Miyamoto; Tomomasa Tsukaguchi; Charles R Bradshaw; George E Allen; Jerome Jullien; Kazuya Matsumoto; J. B. Gurdon; Masayasu Yamada 国際シンポジウム "生殖細胞のエピゲノムダイナミクスとその制御" 2016年02月 [査読有り][招待有り]
  
• マウス胚におけるプロテアソーム系の一過性の阻害は胚性ゲノム活性化の開始を遅延し，産仔への発生を損なう

  樋口 智香; 清水 なつみ; 守田 昂太郎; 内堀 翔; 塚口 智将; 永井 宏平; 安齋 政幸; 山縣 一夫; 細井 美彦; 宮本 圭; 松本 和也 日本繁殖生物学会 講演要旨集 108 (0) P -12-P-12 2015年
• マウス前核期胚の核内においてPeroxiredoxin（Prdx）が過酸化水素の消去に関与する

  守田 昂太郎; 野老 美紀子; 樋口 智香; 内堀 翔; 塚口 智将; 永井 宏平; 安齋 政幸; 山縣 一夫; 細井 美彦; 宮本 圭; 松本 和也 日本繁殖生物学会 講演要旨集 108 (0) P -15-P-15 2015年
• コエンザイムQ10がマウス体外老化卵母細胞の受精とその後の発生に及ぼす影響

  内堀 翔; 樋口 智香; 守田 昂太郎; 塚口 智将; 安齋 政幸; 山縣 一夫; 細井 美彦; 宮本 圭; 松本 和也 日本繁殖生物学会 講演要旨集 108 (0) P -10-P-10 2015年
• 卵子および卵母細胞に特異的なタンパク質は移植された体細胞核に階層的にはたらきかけ急速かつゲノムワイドな転写のリプログラミングを誘導する

  宮本 圭; Jerome Jullien・Vincent Pasque・John; B. Gurdon ライフサイエンス新着論文レビュー（ライフサイエンス統合データベースセンター） 2014年08月 [査読有り][招待有り]
  
• 核内Wave1は卵母細胞における転写の初期化と正常な発生に必要である

  宮本圭 Japanese Scientist in Science 2013 60 -61 2014年 [査読有り][招待有り]
  
• アクチン結合タンパク質Wave1は卵母細胞の核における転写プログラムの初期化と正常な発生に必要である

  宮本圭 ライフサイエンス新着論文レビュー（ライフサイエンス統合データベースセンター） 2013年09月 [査読有り][招待有り]
  
• The roles of Hsp90 in reprogramming process in mouse preimplantation embryonic development

  Luong PQ; Matsumoto M; Suzuki S; Kitamura N; Miyamoto K; Minami N; Yamada M; Imai H CiRA International Symposium 2012年 [査読有り]
  
• Differential nuclear reprogramming of somatic cells by porcine germinal vesicle and metaphase II oocyte extracts.

  Miyamoto K; Tsukiyama T; Minami N; Yamada M; Imai H The 4th Asian Reproductive Biotechnology Conference 2007年 [査読有り]
  
• 「Xenopus卵抽出液による哺乳類細胞のリプログラミング

  宮本 圭; 古澤 軌; Goel Sandeep; 南 直次郎; 山田 雅保; 徳永 智之; 大隅 圭太; 今井 裕 日本畜産学会第105回大会 九州大学 2006年03月
• ドナー細胞の細胞周期制御とミニブタ核移植胚の発生能：G1期あるいはG0/G1期への細胞周期同期化による影響

  宮本 圭; 星野 洋一郎; 長尾 恭光; 南 直次郎; 山田 雅康; 今井 裕 日本畜産学会第104回大会、東京大学 2006年03月 [査読有り]
  
• Reprogramming of intact and permeabilized mammalian somatic cells by Xenopus egg extract

  Miyamoto K; Ohnuki M; Minami N; Yamada M; Imai H The 3rd Asian Reproductive Biotechnology Conference 2006年 [査読有り]
  

受賞

• 2021年04月 近畿大学 研究奨励褒賞
   

  受賞者: 宮本圭
• 2021年01月 日本学士院 日本学士院学術奨励賞
   卵内初期化機構に関する研究 

  受賞者: 宮本圭
• 2020年12月 日本学術振興会 日本学術振興会賞
   卵内初期化機構に関する研究 

  受賞者: 宮本圭
• 2018年09月 日本繁殖生物学会 奨励賞
   卵内リプログラミング機構に関する研究 

  受賞者: 宮本圭
• 2018年04月 The Minister of Education, Culture, Sports, Science and Technology 文部科学大臣表彰 若手科学者賞
   卵内初期化機構に関する研究 

  受賞者: 宮本圭
• 2016年07月 ヒューマン・フロンティア・サイエンス・プログラム Human Frontier Project Grant（2016年7月-2019年6月）
   Nuclear actin assembly in chromatin structure and dynamics for cell cycle control and reprogramming 

  受賞者: 宮本圭
• 2012年04月 Herchel Smith Postdoctoral Fellowship award（2012年4月-2015年3月）
   

  受賞者: 宮本圭
• 2007年11月 Asian Reproductive Biotechnology Society (ARBS), Asian Reproductive Biotechnology Society (ARBS) 「First Prize, Outstanding Presentation Award」
   

  受賞者: 宮本圭
• 2006年12月 Asian Reproductive Biotechnology Society (ARBS) 「Outstanding Presentation Award.」
   

  受賞者: 宮本圭
• 2006年03月 第106回日本畜産学会 優秀発表賞
   

  受賞者: 宮本圭
• 2006年01月 The International Embryo Transfer Society (IETS) Meeting 「Student Research Competition Finalist」
   

  受賞者: 宮本圭

共同研究・競争的資金等の研究課題

• 核内アクチンタンパク質の生物学的意義の解明への助成

  公益財団法人 武田科学振興財団：2022年度 武田科学振興財団 ライフサイエンス研究継続助成

  研究期間 : 2022年09月 -2027年05月 

  代表者 : 宮本圭
• 分子メカニズムに依拠した効率的動物繁殖システムの開発

  日本学術振興会：科学研究費助成事業 基盤研究(B)

  研究期間 : 2023年04月 -2027年03月 

  代表者 : 宮本 圭
• オルガネラの力計測と操作を実現する新規技術の開発と初期胚核における力の意義の解明

  日本学術振興会：科学研究費助成事業 挑戦的研究(開拓)

  研究期間 : 2022年06月 -2026年03月 

  代表者 : 島本 勇太; 岩城 光宏; 宮本 圭
• 母性転写物量を指標とした早期胚質評価法の確立

  公益財団法人 内藤記念科学振興財団：第54回(2022年度) 内藤記念科学奨励金・研究助成

  研究期間 : 2022年12月 -2024年09月 

  代表者 : 宮本圭
• マウス初期胚核の物理特性と核骨格タンパク質の関係性の解明

  研究期間 : 2023年04月 -2024年03月 

  代表者 : 宮本 圭; 島本 勇太
• 核内Fアクチン形成によるヒト子宮内膜間質細胞の脱落膜化機構の解明

  日本学術振興会：科学研究費助成事業 基盤研究(C)

  研究期間 : 2021年04月 -2024年03月 

  代表者 : 田村 功; 宮本 圭
• 全能性細胞の核構築原理

  科学研究費助成事業(科学研究費補助金)：新学術領域研究(研究領域提案型)

  研究期間 : 2019年07月 -2024年03月 

  代表者 : 宮本圭
• マウス初期胚核の物理 特性と核骨格タンパク 質の関係性の解明

  2022年度国立遺伝学研究所共同研究【共同研究（B)】

  研究期間 : 2022年04月 -2023年03月 

  代表者 : 宮本圭; 島本 勇太
• 優良牛の効率的繁殖を可能とする新システムの開発

  日本学術振興会：科学研究費助成事業 挑戦的研究(萌芽)

  研究期間 : 2020年07月 -2022年03月 

  代表者 : 宮本 圭; 山之内 忠幸; 松田 秀雄
• 核内アクチンタンパク質の生物学的意義の解明

  公益財団法人 武田科学振興財団：ライフサイエンス研究助成

  研究期間 : 2019年09月 -2021年09月 

  代表者 : 宮本圭
• 転写解析特化型核移植系を用いたリプログラミング因子の同定

  文部科学省科学研究費助成事業：若手研究（A）

  研究期間 : 2017年04月 -2021年03月 

  代表者 : 宮本圭
• 非侵襲的に高発生能の受精卵を選抜する手法の開発

  公益財団法人 内藤記念科学振興財団：第50回(2018年度) 内藤記念科学奨励金・研究助成

  研究期間 : 2018年12月 -2020年09月 

  代表者 : 宮本圭
• 転写リプログラミングにおけるクロマチン構造変化の階層的理解

  科学研究費助成事業(科学研究費補助金)：新学術領域研究

  研究期間 : 2019年04月 -2019年06月 

  代表者 : 宮本圭
• Nuclear actin assembly in chromatin structure and dynamics for cell cycle control and reprogramming

  Human Frontier Science Program：ヒューマン・フロンティア・サイエンス・プログラム

  研究期間 : 2016年07月 -2019年06月 

  代表者 : 宮本圭
• 時空間的核アクチン重合化制御によるクロマチン構造と転写状態の変動

  文部科学省科学研究費助成事業：新学術領域研究

  研究期間 : 2016年04月 -2018年03月 

  代表者 : 宮本圭
• 体細胞核の全能性獲得に関る分子機構

  文部科学省科学研究費助成事業：新学術領域研究

  研究期間 : 2016年04月 -2018年03月 

  代表者 : 宮本圭
• 細胞分裂に依存しない新規リプログラミング系の構築

  公益財団法人 住友財団：奨学寄附金

  研究期間 : 2015年09月 -2017年03月 

  代表者 : 宮本圭
• マウス胚を用いた細胞分裂非依存的リプログラミング系の構築

  文部科学省科学研究費助成事業：研究活動スタート支援

  研究期間 : 2015年09月 -2016年03月 

  代表者 : 宮本圭
• Herchel Smith Postdoctoral Fellowship Research Grant

  研究期間 : 2012年04月 -2015年03月 

  代表者 : 宮本圭
• collaboration work with Central Institute for Experimental Animals on marmoset

  The Great Britain Sasakawa Foundation Grant

  研究期間 : 2012年12月 -2013年04月 

  代表者 : 宮本圭
• The Grant from the Japan Society for the Promotion of Science

  Research Fellowship Program

  研究期間 : 2007年04月 -2009年03月 

  代表者 : 宮本圭

委員歴

• 2019年10月 - 現在   The Journal of Reproduction and Development   Editorial Board Member
• 2017年02月 - 現在   Scientific Reports   Editorial Board Member
• 2015年05月 - 2019年05月   日本卵子学会   編集委員
• 2015年08月 - 2017年09月   日本胚移植研究会   幹事（庶務）
• 2012年04月 - 2015年03月   Faculty1000   Associate member

担当経験のある科目

生殖工学実験近畿大学
遺伝子工学近畿大学
遺伝子発現制御とエピジェネティクス近畿大学
統計学近畿大学

メディア報道

• Kindai University and collaborators develop proof of concept technology for inducing genome reprogramming in wild and extinct animals

  報道 : 2022年01月13日

  発行元・放送局 : Japan Science and Technology Agency

  番組・新聞雑誌 : Science Japan

  　インターネットメディア
• 近畿大学などは,野生動物や絶滅動物のゲノム初期化を誘導するリプログラミング技術の開発に成功している

  報道 : 2021年11月25日

  執筆者 : 本人以外

  発行元・放送局 : 国立研究開発法人科学技術振興機構

  番組・新聞雑誌 : JST客観日本（中国版）

  科学研究（生物医学）　インターネットメディア
• World-first research: bringing more insights into biodiversity -- A new technique to analyze genomic functions of wild and extinct animals -- Kindai University

  報道 : 2021年11月12日

  番組・新聞雑誌 : Japan University News

  　インターネットメディア
• World-first research: bringing more insights into biodiversity A new technique to analyze genomic functions of wild and extinct animals

  報道 : 2021年11月12日

  番組・新聞雑誌 : the japan times

  　インターネットメディア
• How cloning is being used to save animals from extinction

  報道 : 2021年02月26日

  発行元・放送局 : United States of America

  番組・新聞雑誌 : FOX News Channel

  　テレビ・ラジオ番組
• 宮本氏（岡山出身）学士院奨励賞

  報道 : 2021年01月13日

  番組・新聞雑誌 : 山陽新聞朝刊

  ４面　新聞・雑誌
• 学士院、6人に学術奨励賞

  報道 : 2021年01月13日

  番組・新聞雑誌 : 朝日新聞デジタル

  　新聞・雑誌
• 学士院奨励賞 浦川氏ら６人

  報道 : 2021年01月13日

  番組・新聞雑誌 : 京都新聞

  ５面　新聞・雑誌
• 学士院、学術奨励賞に６氏

  報道 : 2021年01月13日

  番組・新聞雑誌 : 朝日新聞

  ２７面　新聞・雑誌
• 学士院 学術奨励賞に６人

  報道 : 2021年01月13日

  番組・新聞雑誌 : 読売新聞

  ３１面　新聞・雑誌
• 受精卵に重合化アクチン 近大のグループ発見

  報道 : 2020年07月29日

  番組・新聞雑誌 : 毎日新聞大阪版

  P23　新聞・雑誌
• 受精卵の核内構造を発見 近畿大 生殖医療などに貢献期待

  報道 : 2020年07月14日

  番組・新聞雑誌 : 和歌山新報

  １面　新聞・雑誌
• 世界初！命の始まりである受精卵に新たな核構造を発見 動物発生の謎に迫る研究成果

  報道 : 2020年07月01日

  Newscast　インターネットメディア
• 受精卵の細胞核の研究で成果

  報道 : 2020年07月01日

  発行元・放送局 : テレビ和歌山

  番組・新聞雑誌 : WTVニュース

  　テレビ・ラジオ番組
• 受精卵から動物発生 アクチン重合化 重要

  報道 : 2020年07月01日

  番組・新聞雑誌 : 日刊工業新聞

  科学技術・大学 ２５面　新聞・雑誌
• 受精卵が成体になる過程で重要なたんぱく質 近大グループ確認

  報道 : 2020年07月01日

  番組・新聞雑誌 : 毎日新聞デジタル

  　新聞・雑誌
• マンモス化石の細胞核「死んでいなかった」シベリアで発掘 近大、「復活」に前進

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 産経新聞

  社会面 ３０面　新聞・雑誌
• マンモス「復活」へ前進 細胞の核 死んでいなかった」近畿大チーム発表

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 【関東版】産経新聞

  社会面 ２４面　新聞・雑誌
• マンモス細胞核動いた 近大などのチーム確認

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 朝日新聞

  ３面　新聞・雑誌
• マンモス復活へ前進？ 2.8万年前の細胞核 動き確認

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 【関東版】朝日新聞

  社会面 ３３面　新聞・雑誌
• マンモス細胞核目覚めた マウス卵子内 分裂直前の状態に 近大など 永久凍土から発掘

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 読売新聞

  ３７面　新聞・雑誌
• マンモス細胞核目覚めた マウス卵子内で変化

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 【関東版】読売新聞

  社会面 ３７面　新聞・雑誌
• マンモスの細胞核再生 近畿大クローンで復活に前進

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 日本経済新聞

  社会面 ３８面　新聞・雑誌
• マンモス復活へ一歩？細胞分裂の兆し確認

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 毎日新聞

  社会面 ２９面　新聞・雑誌
• マンモス細胞 初期の動き 近畿大など マウス卵子に核移植

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 【関東版】毎日新聞

  総合・社会面 ２５面　新聞・雑誌
• マンモス復活へ前進 細胞核に変化 近大チーム発表

  報道 : 2019年03月12日

  番組・新聞雑誌 : 【関東版】東京新聞

  朝刊 総合面 ２面　新聞・雑誌
• マンモスの遺伝子 “活動する力を保っていた” 近畿大など発表

  報道 : 2019年03月11日

  サイカル(SCIENCE＆CULTURE) journal by NHK　インターネットメディア
• カギは遺伝子密度 細胞の初期化 再生医療 発展に期待 近畿大など発見

  報道 : 2018年07月11日

  番組・新聞雑誌 : 日刊工業新聞

  ２４面　新聞・雑誌
• アクチンタンパク質が細胞核形成の重要因子

  報道 : 2017年12月01日

  番組・新聞雑誌 : 科学新聞

  ８面　新聞・雑誌
• クローンマウスの出生率向上について

  報道 : 2017年04月28日

  番組・新聞雑誌 : フジサンケイビジネスアイ・西日本

  １９面　新聞・雑誌
• クローンマウスの作製効率向上について

  報道 : 2017年04月19日

  番組・新聞雑誌 : 日経産業新聞

  ９面　新聞・雑誌
• 体細胞クローンマウスの発生率向上について

  報道 : 2017年04月17日

  番組・新聞雑誌 : 日刊工業新聞

  １７面　新聞・雑誌
• クローンマウスの作製効率向上について

  報道 : 2017年04月17日

  番組・新聞雑誌 : 日本經濟新聞（夕刊）

  １２面　新聞・雑誌
• クローンマウスの作製効率向上について

  報道 : 2017年04月17日

  番組・新聞雑誌 : 化学工業日報

  １６面　新聞・雑誌
• クローンマウスの作製効率向上について

  報道 : 2017年04月16日

  番組・新聞雑誌 : 東奥日報社

  １６面　新聞・雑誌
• クローンマウスの作製効率向上について

  報道 : 2017年04月16日

  番組・新聞雑誌 : 四国新聞

  ３面　新聞・雑誌
• 遺伝子改変の効率アップについて

  報道 : 2015年11月19日

  番組・新聞雑誌 : 読売新聞

  ３７面　新聞・雑誌

その他

• 2018年02月 - 2018年02月  「世界をリードする最先端の分子発生工学研究室」 

  週刊 東洋経済 第6772号 2018年2月3日発行 P111

その他のリンク

researchmap

https://researchmap.jp/KeiMiyamoto