
KAJIKAWA Masataka
Department of Biotechnological Science | Associate Professor |
Last Updated :2025/04/18
■Researcher basic information
ORCID ID
0000-0003-0361-2769
J-Global ID
Profile
2018年農芸化学奨励賞を受賞
http://www.jsbba.or.jp/wp-content/uploads/file/award/2018/award_abstracts_2018_kajikawa.pdf
Research Keyword
- 分子育種 酵母スクリーニング 栄養感知 環境応答 脂質生産 一次代謝 機能性物質 植物脂質 分析化学 代謝工学 形質転換 藻類 植物分子生物学 植物生理学 Biotechnology Plant Molecular Biology Biotechnology Plant Molecular Biology
Research Field
■Career
Career
- 2019/04 - Today Kindai UniversityFaculty of Biology-Oriented Science and Technology, Department of Biotechnological Science講師
- 2012/05 - 2019/03 Kyoto University生命科学研究科 微生物細胞機構学分野助教
- 2012/02 - 2012/05 Kyoto University生命科学研究科 微生物細胞機構学分野特定研究員
- 2011/05 - 2012/02 The University of Tokyo農学生命科学研究科 植物栄養学研究室特任助教
- 2011/04 - 2011/05 The University of Tokyo農学生命科学研究科 植物栄養学研究室博士研究員
- 2005/04 - 2011/03 Nara Institute of Science and TechnologyGraduate School of Biological Sciences博士研究員
Educational Background
■Research activity information
Award
Paper
- Kanade Tatsumi; Takuji Ichino; Natsumi Isaka; Akifumi Sugiyama; Eiko Moriyoshi; Yozo Okazaki; Yasuhiro Higashi; Masataka Kajikawa; Yoshinori Tsuji; Hideya Fukuzawa; Kiminori Toyooka; Mayuko Sato; Ikuyo Ichi; Koichiro Shimomura; Hiroyuki Ohta; Kazuki Saito; Kazufumi YazakiJournal of Experimental Botany Oxford University Press (OUP) 0022-0957 2022/10 [Refereed]
Abstract Plants produce a large variety of lipophilic metabolites, many of which are secreted by cells and accumulated in apoplasts. These compounds often play a role to protect plants from environmental stresses. However, little is known how these lipophilic compounds are secreted into apoplastic spaces. In this study, we used shikonin-producing cultured cells of Lithospermum erythrorhizon as an experimental model system to analyze the secretion of lipophilic metabolites taking its advantages, such as the high production rate and the clear inducibility using culture conditions. Shikonin derivatives are lipophilic red naphthoquinone compounds that accumulate exclusively in apoplastic spaces of these cells and also in the root epidermis of intact plant. Microscopic analysis showed that shikonin is accumulated in a vast number of particles on the cell wall. Lipidomic analysis showed that L. erythrorhizon cultured cells secrete an appreciable portion of triacylglycerol (24 to 38% of total TAG), composed predominantly of saturated fatty acids. Moreover, in vitro reconstitution assay showed that TAG encapsulates shikonin derivatives with phospholipids to form lipid droplet-like structures. These findings suggest a novel role for TAG as a matrix lipid, a molecular component involved in the secretion of specialized lipophilic metabolites. - Haruka Shinkawa; Masataka Kajikawa; Tomoyuki Furuya; Ryuichi Nishihama; Hirokazu Tsukaya; Takayuki Kohchi; Hideya FukuzawaPlant and Cell Physiology Oxford University Press (OUP) 0032-0781 2022/06 [Refereed]
Abstract Plant growth and development are regulated by environmental factors, including nutrient availability and light conditions, via endogenous genetic signaling pathways. Phosphorylation-dependent protein modification plays a major role in the regulation of cell proliferation in stress conditions, and several protein kinases have been shown to function in response to nutritional status, including dual-specificity tyrosine phosphorylation-regulated kinases (DYRKs). Although DYRKs are widely conserved in eukaryotes, the physiological functions of DYRKs in land plants are still to be elucidated. In the liverwort Marchantia polymorpha, a model bryophyte, four putative genes encoding DYRK-homologous proteins, each of which belongs to the subfamily Yak1, DYRKP, DYRK2, or PRP4K, were identified. MpYAK1-defective male and female mutant lines generated by a CRISPR/Cas9 system showed smaller sizes of thalli than did the wild-type plants, and repressed cell divisions in the apical notch regions. The Mpyak1 mutants developed rhizoids from gemmae in the gemma cup before release. The Mpyak1 lines developed sexual organs even in non-inductive short-day photoperiod conditions supplemented with far-red light. In nitrogen (N)-deficient conditions, rhizoid elongation was inhibited in the Mpyak1 mutants. In conditions with aeration with 0.08% CO2 (v/v) and N-depletion, Mpyak1 mutants accumulated higher levels of sucrose and lower levels of starch compared to wild-type. Transcriptomic analyses revealed that expression of peroxidase genes was differentially affected by MpYAK1. These results suggest that MpYAK1 is involved in the maintenance of plant growth and developmental responses to light conditions and nutrient signaling. - Bae Young Choi; Hanul Kim; Donghwan Shim; Sunghoon Jang; Yasuyo Yamaoka; Seungjun Shin; Takashi Yamano; Masataka Kajikawa; EonSeon Jin; Hideya Fukuzawa; Youngsook LeeThe Plant Cell Oxford University Press ({OUP}) 34 (2) 910 - 926 1040-4651 2021/12 [Refereed]
Abstract Photosynthetic organisms are exposed to various environmental sources of oxidative stress. Land plants have diverse mechanisms to withstand oxidative stress, but how microalgae do so remains unclear. Here, we characterized the Chlamydomonas reinhardtii basic leucine zipper (bZIP) transcription factor BLZ8, which is highly induced by oxidative stress. Oxidative stress tolerance increased with increasing BLZ8 expression levels. BLZ8 regulated the expression of genes likely involved in the carbon-concentrating mechanism (CCM): HIGH-LIGHT ACTIVATED 3 (HLA3), CARBONIC ANHYDRASE 7 (CAH7), and CARBONIC ANHYDRASE 8 (CAH8). BLZ8 expression increased the photosynthetic affinity for inorganic carbon under alkaline stress conditions, suggesting that BLZ8 induces the CCM. BLZ8 expression also increased the photosynthetic linear electron transfer rate, reducing the excitation pressure of the photosynthetic electron transport chain and in turn suppressing reactive oxygen species (ROS) production under oxidative stress conditions. A carbonic anhydrase inhibitor, ethoxzolamide, abolished the enhanced tolerance to alkaline stress conferred by BLZ8 overexpression. BLZ8 directly regulated the expression of the three target genes and required bZIP2 as a dimerization partner in activating CAH8 and HLA3. Our results suggest that a CCM-mediated increase in the CO2 supply for photosynthesis is critical to minimize oxidative damage in microalgae, since slow gas diffusion in aqueous environments limits CO2 availability for photosynthesis, which can trigger ROS formation. - Furuya T; Shinkawa H; Kajikawa M; Nishihama R; Kohchi T; Fukuzawa H; Tsukaya HJournal of plant research 134 (6) 1265 - 1277 2021/09 [Refereed]
Dual-specificity tyrosine phosphorylation-regulated kinases (DYRKs) are activated via the auto-phosphorylation of conserved tyrosine residues in their activation loop during protein translation, and they then phosphorylate serine/threonine residues on substrates. The DYRK family is widely conserved in eukaryotes and is composed of six subgroups. In plant lineages, DYRK homologs are classified into four subgroups, DYRK2s, yet another kinase1s, pre-mRNA processing factor 4 kinases, and DYRKPs. Only the DYRKP subgroup is plant-specific and has been identified in a wide array of plant lineages, including land plants and green algae. It has been suggested that in Arabidopsis thaliana DYRKPs are involved in the regulation of centripetal nuclear positioning induced by dark light conditions. However, the molecular functions, such as kinase activity and the developmental and physiological roles of DYRKPs are poorly understood. Here, we focused on a sole DYRKP ortholog in the model bryophyte, Marchantia polymorpha, MpDYRKP. MpDYRKP has a highly conserved kinase domain located in the C-terminal region and shares common sequence motifs in the N-terminal region with other DYRKP members. To identify the roles of MpDYRKP in M. polymorpha, we generated loss-of-function Mpdyrkp mutants via genome editing. Mpdyrkp mutants exhibited abnormal, shrunken morphologies with less flattening in their vegetative plant bodies, thalli, and male reproductive organs, antheridial receptacles. The surfaces of the thalli in the Mpdyrkp mutants appeared uneven and disordered. Moreover, their epidermal cells were drastically altered to a narrower shape when compared to the wild type. These results suggest that MpDYRKP acts as a morphological regulator, which contributes to orderly tissue morphogenesis via the regulation of cell shape. - Nao Nitta; Takanori Iino; Akihiro Isozaki; Mai Yamagishi; Yasutaka Kitahama; Shinya Sakuma; Yuta Suzuki; Hiroshi Tezuka; Minoru Oikawa; Fumihito Arai; Takuya Asai; Dinghuan Deng; Hideya Fukuzawa; Misa Hase; Tomohisa Hasunuma; Takeshi Hayakawa; Kei Hiraki; Kotaro Hiramatsu; Yu Hoshino; Mary Inaba; Yuki Inoue; Takuro Ito; Masataka Kajikawa; Hiroshi Karakawa; Yusuke Kasai; Yuichi Kato; Hirofumi Kobayashi; Cheng Lei; Satoshi Matsusaka; Hideharu Mikami; Atsuhiro Nakagawa; Keiji Numata; Tadataka Ota; Takeichiro Sekiya; Kiyotaka Shiba; Yoshitaka Shirasaki; Nobutake Suzuki; Shunji Tanaka; Shunnosuke Ueno; Hiroshi Watarai; Takashi Yamano; Masayuki Yazawa; Yusuke Yonamine; Dino Di Carlo; Yoichiroh Hosokawa; Sotaro Uemura; Takeaki Sugimura; Yasuyuki Ozeki; Keisuke GodaNature communications Springer Science and Business Media LLC 11 (1) 3452 - 3452 2020/07 [Refereed]
The advent of image-activated cell sorting and imaging-based cell picking has advanced our knowledge and exploitation of biological systems in the last decade. Unfortunately, they generally rely on fluorescent labeling for cellular phenotyping, an indirect measure of the molecular landscape in the cell, which has critical limitations. Here we demonstrate Raman image-activated cell sorting by directly probing chemically specific intracellular molecular vibrations via ultrafast multicolor stimulated Raman scattering (SRS) microscopy for cellular phenotyping. Specifically, the technology enables real-time SRS-image-based sorting of single live cells with a throughput of up to ~100 events per second without the need for fluorescent labeling. To show the broad utility of the technology, we show its applicability to diverse cell types and sizes. The technology is highly versatile and holds promise for numerous applications that are previously difficult or undesirable with fluorescence-based technologies. - Kajikawa M; Fukuzawa HFrontiers in Plant Science 2020/02 [Refereed]
- Hiwatashi T; Goh H; Yasui Y; Koh LQ; Takami H; Kajikawa M; Kirita H; Kanazawa T; Minamino N; Togawa T; Sato M; Wakazaki M; Yamaguchi K; Shigenobu S; Ishizaki KCurrent biology : CB 2019/10 [Refereed]
- Hidayati NA; Yamada-Oshima Y; Iwai M; Yamano T; Kajikawa M; Sakurai N; Suda K; Sesoko K; Hori K; Obayashi T; Shimojima M; Fukuzawa H; Ohta HThe Plant journal : for cell and molecular biology 0960-7412 2019/07 [Refereed]
- Yamaoka Y; Shin S; Choi BY; Kim H; Jang S; Kajikawa M; Yamano T; Kong F; Legeret B; Fukuzawa H; Li-Beisson Y; Lee YThe Plant cell American Society of Plant Biologists ({ASPB}) 31 (5) 1127 - 1140 2019/03 [Refereed]
- Shinkawa H; Kajikawa M; Nomura Y; Ogura M; Sawaragi Y; Yamano T; Nakagami H; Sugiyama N; Ishihama Y; Kanesaki Y; Yoshikawa H; Fukuzawa HPlant & cell physiology 0032-0781 2019/01 [Refereed]
- Kajikawa M; Yamauchi M; Shinkawa H; Tanaka M; Hatano K; Nishimura Y; Kato M; Fukuzawa HPlant & cell physiology 0032-0781 2018/10 [Refereed]
- Tanaka N; Uraguchi S; Kajikawa M; Saito A; Ohmori Y; Fujiwara TThe Plant journal : for cell and molecular biology 0960-7412 2018/09 [Refereed]
- 梶川昌孝; 福澤秀哉化学と生物 56 (4) 246‐247 0453-073X 2018/03
- Kajikawa M; Sierro N; Hashimoto T; Shoji TPlant Signal Behavior e1338225 2017/06 [Refereed]
Kajikawa M, Sierro N, Hashimoto T, Shoji T, Plant signaling & behavior, 2017, 2017 - Masataka Kajikawa; Nicolas Sierro; Haruhiko Kawaguchi; Nicolas Bakaher; Nikolai V. Ivanov; Takashi Hashimoto; Tsubasa ShojiPlant Physiology American Society of Plant Biologists ({ASPB}) 174 (2) 999 - 1011 2017/06 [Refereed]
- 福澤秀哉; 梶川昌孝バイオサイエンスとインダストリー 75 (3) 242‐243 0914-8981 2017/05
- Kajikawa M; Abe T; Ifuku K; Furutani KI; Yan D; Okuda T; Ando A; Kishino S; Ogawa J; Fukuzawa H6 36809 2016/11 [Refereed]
Kajikawa M, Abe T, Ifuku K, Furutani KI, Yan D, Okuda T, Ando A, Kishino S, Ogawa J, Fukuzawa H, Scientific reports, 2016, vol. 6, pp. 36809, 2016 - Akashi K; Yoshimura K; Kajikawa M; Hanada K; Kosaka R; Kato A; Katoh A; Nanasato Y; Tsujimoto H; Yokota A80 (10) 1907 - 1916 2016/10 [Refereed]
Akashi K, Yoshimura K, Kajikawa M, Hanada K, Kosaka R, Kato A, Katoh A, Nanasato Y, Tsujimoto H, Yokota A, Bioscience, biotechnology, and biochemistry, 2016, vol. 80, no. 10, pp. 1907-1916, 2016 - Kajikawa M; Sawaragi Y; Shinkawa H; Yamano T; Ando A; Kato M; Hirono M; Sato N; Fukuzawa HPlant physiology 168 (2) 752 - 764 0032-0889 2015/06 [Refereed]
Kajikawa M, Sawaragi Y, Shinkawa H, Yamano T, Ando A, Kato M, Hirono M, Sato N, Fukuzawa H, Plant physiology, 2015, vol. 168, no. 2, pp. 752-764, 2015 - Kajikawa M; Kinohira S; Ando A; Shimoyama M; Kato M; Fukuzawa HPloS one 10 (3) e0120446 2015 [Refereed]
Kajikawa M, Kinohira S, Ando A, Shimoyama M, Kato M, Fukuzawa H, PloS one, 2015, vol. 10, no. 3, pp. e0120446, 2015 - Kihara H; Tanaka M; Yamato KT; Horibata A; Yamada A; Kita S; Ishizaki K; Kajikawa M; Fukuzawa H; Kohchi T; Akakabe Y; Matsui KPhytochemistry 107 42 - 49 0031-9422 2014/11 [Refereed]
Kihara H, Tanaka M, Yamato KT, Horibata A, Yamada A, Kita S, Ishizaki K, Kajikawa M, Fukuzawa H, Kohchi T, Akakabe Y, Matsui K, Phytochemistry, 2014, vol. 107, pp. 42-49, 2014 - Wang L; Yamano T; Kajikawa M; Hirono M; Fukuzawa HPhotosynthesis Research 121 (2-3) 1 - 10 0166-8595 2014/09 [Refereed]
- Yoshihiro Ohmori; Yayoi Inui; Masataka Kajikawa; Atsumi Nakata; Naoyuki Sotta; Koji Kasai; Shimpei Uraguchi; Nobuhiro Tanaka; Sho Nishida; Takahiro Hasegawa; Takuya Sakamoto; Yuko Kawara; Kayoko Aizawa; Haruka Fujita; Ke Li; Naoya Sawaki; Koshiro Oda; Ryuichiro Futagoishi; Takahiro Tsusaka; Satomi Takahashi; Junpei Takano; Shinji Wakuta; Akira Yoshinari; Masataka Uehara; Shigeki Takada; Hayato Nagano; Kyoko Miwa; Izumi Aibara; Takuya Ojima; Kaoru Ebana; Satoru Ishikawa; Kuni Sueyoshi; Hiroshi Hasegawa; Tetsuro Mimura; Mari Mimura; Natsuko I. Kobayashi; Jun Furukawa; Daisuke Kobayashi; Toshiyasu Okouchi; Keitaro Tanoi; Toru FujiwaraJournal of Plant Research 127 (1) 57 - 66 0918-9440 2014/01 [Refereed]
After the accident of the Fukushima 1 Nuclear Power Plant in March 2011, radioactive cesium was released and paddy fields in a wide area including Fukushima Prefecture were contaminated. To estimate the levels of radioactive Cs accumulation in rice produced in Fukushima, it is crucial to obtain the actual data of Cs accumulation levels in rice plants grown in the actual paddy field in Fukushima City. We herein conducted a two-year survey in 2011 and 2012 of radioactive and non-radioactive Cs accumulation in rice using a number of rice cultivars grown in the paddy field in Fukushima City. Our study demonstrated a substantial variation in Cs accumulation levels among the cultivars of rice. © 2013 The Botanical Society of Japan and Springer Japan. - Ohmori Y; Kajikawa M; Nishida S; Tanaka N; Kobayashi NI; Tanoi K; Furukawa J; Fujiwara TJournal of Plant Research 127 (1) 67 - 71 0918-9440 2014 [Refereed]
Ohmori Y, Kajikawa M, Nishida S, Tanaka N, Kobayashi NI, Tanoi K, Furukawa J, Fujiwara T, Journal of plant research, 2014, vol. 127, no. 1, pp. 67-71, 2014 - Tanaka N; Uraguchi S; Saito A; Kajikawa M; Kasai K; Sato Y; Nagamura Y; Fujiwara TPlant and Cell Physiology 54 (12) 2011 - 2019 0032-0781 2013/12 [Refereed]
Tanaka N, Uraguchi S, Saito A, Kajikawa M, Kasai K, Sato Y, Nagamura Y, Fujiwara T, Plant & cell physiology, 2013, vol. 54, no. 12, pp. 2011-2019, 2013 - 緑藻クラミドモナスにおける無機炭素濃縮機構と脂質代謝福澤, 秀哉; 山野, 隆志; 梶川, 昌孝光合成研究 22 (3) 174 - 184 2012/12 [Refereed]
- Nozomu Sakurai; Yoshiyuki Ogata; Takeshi Ara; Ryosuke Sano; Nayumi Akimoto; Atsushi Hiruta; Hideyuki Suzuki; Masataka Kajikawa; Utut Widyastuti; Sony Suharsono; Akiho Yokota; Kinya Akashi; Jun Kikuchi; Daisuke ShibataPlant Biotechnology Japanese Society for Plant Cell and Molecular Biology 29 (2) 131 - 135 2012 [Refereed]
- Masataka Kajikawa; Kaoru Morikawa; Masayo Inoue; Utut Widyastuti; Sony Suharsono; Akiho Yokota; Kinya AkashiPlant Biotechnology Japanese Society for Plant Cell and Molecular Biology 29 (2) 145 - 153 2012 [Refereed]
- Minamisawa N; Sato M; Cho KH; Ueno H; Takechi K; Kajikawa M; Yamato KT; Ohyama K; Toyooka K; Kim GT; Horiguchi G; Takano H; Ueda T; Tsukaya H68 (5) 788 - 799 2011/12 [Refereed]
Minamisawa N, Sato M, Cho KH, Ueno H, Takechi K, Kajikawa M, Yamato KT, Ohyama K, Toyooka K, Kim GT, Horiguchi G, Takano H, Ueda T, Tsukaya H, The Plant journal : for cell and molecular biology, 2011, vol. 68, no. 5, pp. 788-799, 2011 - Akashi K; Yoshida K; Kuwano M; Kajikawa M; Yoshimura K; Hoshiyasu S; Inagaki N; Yokota APlanta 233 (5) 947 - 960 2011/05 [Refereed]
Akashi K, Yoshida K, Kuwano M, Kajikawa M, Yoshimura K, Hoshiyasu S, Inagaki N, Yokota A, Planta, 2011, vol. 233, no. 5, pp. 947-960, 2011 - Kajikawa M; Shoji T; Kato A; Hashimoto TPlant Physiology 155 (4) 2010 - 2022 2011/04 [Refereed]
Kajikawa M, Shoji T, Kato A, Hashimoto T, Plant physiology, 2011, vol. 155, no. 4, pp. 2010-2022, 2011 - Kajikawa M; Fujibe T; Uraguchi S; Miwa K; Fujiwara TBioscience, biotechnology, and biochemistry 75 (12) 2421 - 2423 0916-8451 2011 [Refereed]
Kajikawa M, Fujibe T, Uraguchi S, Miwa K, Fujiwara T, Bioscience, biotechnology, and biochemistry, 2011, vol. 75, no. 12, pp. 2421-2423, 2011 - Shoji T; Kajikawa M; Hashimoto TPlant Cell 22 (10) 3390 - 3409 2010/10 [Refereed]
Shoji T, Kajikawa M, Hashimoto T, The Plant cell, 2010, vol. 22, no. 10, pp. 3390-3409, 2010 - Kajikawa M; Morikawa K; Abe Y; Yokota A; Akashi KPlant Cell Reports 29 (7) 771 - 778 2010/07 [Refereed]
Kajikawa M, Morikawa K, Abe Y, Yokota A, Akashi K, Plant cell reports, 2010, vol. 29, no. 7, pp. 771-778, 2010 - Uchida H; Yamashita H; Kajikawa M; Ohyama K; Nakayachi O; Sugiyama R; Yamato KT; Muranaka T; Fukuzawa H; Takemura M; Ohyama KPlanta 229 (6) 1243 - 1252 2009/05 [Refereed]
Uchida H, Yamashita H, Kajikawa M, Ohyama K, Nakayachi O, Sugiyama R, Yamato KT, Muranaka T, Fukuzawa H, Takemura M, Ohyama K, Planta, 2009, vol. 229, no. 6, pp. 1243-1252, 2009 - Kajikawa M; Hirai N; Hashimoto TPlant Molecular Biology 69 (3) 287 - 298 2009/02 [Refereed]
Kajikawa M, Hirai N, Hashimoto T, Plant molecular biology, 2009, vol. 69, no. 3, pp. 287-298, 2009 - Kajikawa M; Matsui K; Ochiai M; Tanaka Y; Kita Y; Ishimoto M; Kohzu Y; Shoji S; Yamato KT; Ohyama K; Fukuzawa H; Kohchi TBioscience, Biotechnology and Biochemistry 72 (2) 435 - 444 2008/02 [Refereed]
Kajikawa M, Matsui K, Ochiai M, Tanaka Y, Kita Y, Ishimoto M, Kohzu Y, Shoji S, Yamato KT, Ohyama K, Fukuzawa H, Kohchi T, Bioscience, biotechnology, and biochemistry, 2008, vol. 72, no. 2, pp. 435-444, 2008 - Yamato KT; Ishizaki K; Fujisawa M; Okada S; Nakayama S; Fujishita M; Bando H; Yodoya K; Hayashi K; Bando T; Hasumi A; Nishio T; Sakata R; Yamamoto M; Yamaki A; Kajikawa M; Yamano T; Nishide T; Choi SH; Shimizu-Ueda Y2007/04 [Refereed]
- Kajikawa M; Yamato KT; Sakai Y; Fukuzawa H; Ohyama K; Kohchi TFEBS Letters 580 (1) 149 - 154 0014-5793 2006/01 [Refereed]
Kajikawa M, Yamato KT, Sakai Y, Fukuzawa H, Ohyama K, Kohchi T, FEBS letters, 2006, vol. 580, no. 1, pp. 149-154, 2006 - Kajikawa M; Yamato KT; Kohzu Y; Shoji S; Matsui K; Tanaka Y; Sakai Y; Fukuzawa HPlant and Cell Physiology 47 (1) 64 - 73 0032-0781 2006/01 [Refereed]
Kajikawa M, Yamato KT, Kohzu Y, Shoji S, Matsui K, Tanaka Y, Sakai Y, Fukuzawa H, Plant & cell physiology, 2006, vol. 47, no. 1, pp. 64-73, 2006 - Kajikawa M; Yamato KT; Fukuzawa H; Sakai Y; Uchida H; Ohyama KPhytochemistry 66 (15) 1759 - 1766 0031-9422 2005/08 [Refereed]
Kajikawa M, Yamato KT, Fukuzawa H, Sakai Y, Uchida H, Ohyama K, Phytochemistry, 2005, vol. 66, no. 15, pp. 1759-1766, 2005 - Kajikawa M; Yamato KT; Kohzu Y; Nojiri M; Sakuradani E; Shimizu S; Sakai Y; Fukuzawa H; Ohyama KPlant Molecular Biology 54 (3) 335 - 352 0167-4412 2004/02 [Refereed]
- Hidenobu Uchida; Osamu Nakayachi; Motoyasu Otani; Masataka Kajikawa; Yoshihito Kohzu; Katsuyuki T. Yamato; Hideya Fukuzawa; Takiko Shimada; Kanji OhyamaPlant Biotechnology Japanese Society for Plant Cell and Molecular Biology 21 (5) 397 - 399 2004 [Refereed]
- Masataka Kajikawa; Katsuyuki T. Yamato; Yoshito Kohzu; Ryoko Sakata; Hideya Fukuzawa; Hidenobu Uchida; Kanji OhyamaPlant Biotechnology Japanese Society for Plant Cell and Molecular Biology 21 (5) 349 - 353 2004 [Refereed]
- Kajikawa M; Yamato KT; Kanamaru H; Sakuradani E; Shimizu S; Fukuzawa H; Sakai Y; Ohyama KBioscience, Biotechnology and Biochemistry 67 (8) 1667 - 1674 0916-8451 2003/08 [Refereed]
Kajikawa M, Yamato KT, Kanamaru H, Sakuradani E, Shimizu S, Fukuzawa H, Sakai Y, Ohyama K, Bioscience, biotechnology, and biochemistry, 2003, vol. 67, no. 8, pp. 1667-1674, 2003 - Kajikawa M; Yamaoka S; Yamato KT; Kanamaru H; Sakuradani E; Shimizu S; Fukuzawa H; Ohyama KBioscience, Biotechnology and Biochemistry 67 (3) 605 - 612 0916-8451 2003/03 [Refereed]
Kajikawa M, Yamaoka S, Yamato KT, Kanamaru H, Sakuradani E, Shimizu S, Fukuzawa H, Ohyama K, Bioscience, biotechnology, and biochemistry, 2003, vol. 67, no. 3, pp. 605-612, 2003 - M Fujisawa; S Nakayama; T Nishio; M Fujishita; K Hayashi; K Ishizaki; M Kajikawa; KT Yamato; H Fukuzawa; K OhyamaCHROMOSOME RESEARCH KLUWER ACADEMIC PUBL 11 (7) 695 - 703 0967-3849 2003 [Refereed]
In the haploid dioecious liverwort, Marchantia polymorpha, the X chromosome, but not the Y, carries a cluster of ribosomal RNA genes (rDNAs). Here we show that sequences of 5S, 17S, 5.8S and 26S rDNAs are highly conserved(> 99% identity) between the X chromosomal and autosomal rDNA repeat units, but the intergenic spacer sequences differ considerably. The most prominent difference is the presence of a 615-bp DNA fragment in the intergenic spacer, X615, which has accumulated predominantly in the rDNA cluster of the X chromosome. These observations suggest that the rDNA repeat unit on the X chromosome evolved independently of that on autosomes, incorporating sex chromosome-specific sequences.
MISC
- 辻敬典; 岡田祐也; 長房すずか; 宮本明日香; 新川はるか; 新川はるか; 新川友貴; 山野隆志; 梶川昌孝; 梶川昌孝; 福澤秀哉 日本植物生理学会年会(Web) 63rd- 2022
- 長房すずか; 宮本あすか; 新川はるか; 新川友貴; 山野隆志; 辻敬典; 梶川昌孝; 梶川昌孝; 福澤秀哉 日本植物生理学会年会(Web) 61st- 2020
- 宮本明日香; 梶川昌孝; 梶川昌孝; 新川はるか; 辻敬典; 山野隆志; 福澤秀哉 日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2020- 2020
- 木下あかり; 辻敬典; 新川はるか; 梶川昌孝; 梶川昌孝; 山野隆志; 福澤秀哉 日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2020- 2020
- 新川はるか; 太田羽藍; 梶川昌孝; 梶川昌孝; 野村裕子; 小倉真優; 椹木裕里; 山野隆志; 中神弘史; 杉山直幸; 石濱泰; 兼崎友; 吉川博文; 福澤秀哉 日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2020- 2020
- 梶川 昌孝; 山内 万里花; 新川 はるか; 田中 学; 幡野 恭子; 西村 芳樹; 加藤 美砂子; 福澤 秀哉 藻類 67- (1) 70 2019/03
- 巽奏; 市野琢爾; 岡咲洋三; 岡咲洋三; 東泰弘; 梶川昌孝; 佐藤繭子; 豊岡公徳; 福澤秀哉; 斉藤和季; 斉藤和季; 矢崎一史 日本分子生物学会年会プログラム・要旨集(Web) 42nd- 2019
- 長房すずか; 宮本明日香; 新川はるか; 新川友貴; 山野隆志; 梶川昌孝; 福澤秀哉 藻類 67- (1) 2019
- 新川はるか; 梶川昌孝; 西浜竜一; 河内孝之; 福澤秀哉 日本植物学会大会研究発表記録 83rd- 2019
- 梶川昌孝; 山内万里香; 新川はるか; 田中学; 幡野恭子; 西村芳樹; 加藤美砂子; 福澤秀哉 第59回日本植物生理学会年会要旨集 59th- 2018/03
- 本庄智也; 梶川昌孝; 伊福健太郎; 菓子野康浩; 福澤秀哉 日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2018- 2018
- 梶川昌孝; 本庄智也; 伊福健太郎; 菓子野康浩; 小川順; 福澤秀哉 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 36th- 2018
- 巽奏; 岡咲洋三; 岡咲洋三; 梶川昌孝; 市育代; 市野琢爾; 斉藤和季; 斉藤和季; 福澤秀哉; 矢崎一史 日本植物生理学会年会(Web) 59th- 2018
- 巽奏; 岡咲洋三; 岡咲洋三; 佐藤繭子; 豊岡公徳; 市野琢爾; 梶川昌孝; 福澤秀哉; 斉藤和季; 斉藤和季; 矢崎一史 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 36th- 2018
- 長房すずか; 宮本明日香; 嶋村大亮; 本庄智也; 新川友貴; 香西紀子; 梶川昌孝; 山野隆志; 福澤秀哉 日本植物学会大会研究発表記録 82nd- 2018
- 宮本明日香; 新川友貴; 嶋村大亮; 本庄智也; 香西紀子; HU Donghui; 豊川知華; 新川はるか; 梶川昌孝; 山野隆志; 福澤秀哉 日本植物生理学会年会(Web) 59th- 2018
- 田中伸裕; 田中伸裕; 浦口晋平; 浦口晋平; 梶川昌孝; 梶川昌孝; 斎藤彰宏; 斎藤彰宏; 大森良弘; 藤原徹 育種学研究 20- 2018
- 梶川昌孝; 山内万里花; 新川はるか; 田中学; 幡野恭子; 西村芳樹; 奥公秀; 阪井康能; 加藤美砂子; 加藤美砂子; 福澤秀哉 日本植物学会大会研究発表記録 81st- 137 2017/09
- PaIspS を用いた光合成藻類によるイソプレン生産の試み浅野卓也; 杉山暁史; 伊福健太郎; 奥村智憲; 梶川昌孝; 福澤秀哉; 矢崎一史 日本農芸化学会2017年度京都大会 2017/03
- 梶川昌孝; 安部竜樹; 伊福健太郎; 古谷憲一; 閻東怡; 奥田知生; 安藤晃規; 岸野重信; 小川順; 福澤秀哉 日本農芸化学会2017年度京都大会 2017- 2017/03
- 梶川昌孝; 伊福健太郎; 菓子野康浩; 福澤秀哉 マリンバイオテクノロジー学会大会講演要旨集 19th- 2017
- 巽奏; 井坂夏海; 岡咲洋三; 佐藤繭子; 豊岡公徳; 梶川昌孝; 福澤秀哉; 斉藤和季; 斉藤和季; 矢崎一史 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 35th- 2017
- 田中伸裕; 浦口晋平; 梶川昌孝; 斎藤彰宏; 大森良弘; 藤原徹 日本土壌肥料学会講演要旨集 63- 2017
- 梶川昌孝; 福澤秀哉 マリンバイオテクノロジー学会大会講演要旨集 18th- 2016
- 梶川昌孝; 安部竜樹; 伊福健太郎; 小川順; 福澤秀哉 第17回 マリンバイオテクノロジー学会 17th- 2015/05
- 安部 竜樹; 梶川 昌孝; 伊福 健太郎; 小川 順; 福澤 秀哉 日本農芸化学会2015年度大会(岡山) 2015- 2015/03
- 梶川昌孝; 椹木裕里; 新川はるか; 山野隆志; 安藤晶; 加藤美砂子; 廣野雅文; 佐藤直樹; 佐藤直樹; 福澤秀哉 日本植物生理学会年会要旨集 56th- 2015
- 田中伸裕; 梶川昌孝; 斎藤彰宏; 大森良弘; 浦口晋平; 藤原徹 日本土壌肥料学会講演要旨集 61- 2015
- Lianyong Wang; Takashi Yamano; Masataka Kajikawa; Masafumi Hirono; Hideya Fukuzawa PHOTOSYNTHESIS RESEARCH 121- (2-3) 175 -184 2014/09
- KATO ATSUSHI; KAJIKAWA MASATAKA; NANASATO YOSHIHIKO; TSUJIMOTO HISASHI; YOKOTA AKIHO; AKASHI KIN'YA 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 32nd- 67 2014/07
- WANG LIANYONG; YAMANO TAKASHI; TAKANE SYUNSUKE; FUNATSU NAOKO; KAJIKAWA MASATAKA; HIRONO MASAFUMI; FUKAZAWA HIDEYA 日本植物生理学会年会要旨集 55th- 332 2014/03
- TANAKA NOBUHIRO; URAGUCHI SHINPEI; OHMORI YOSHIHIRO; SAITO AKIHIRO; KAJIKAWA MASATAKA; FUJIWARA TORU 日本植物生理学会年会要旨集 55th- 145 2014/03
- KAJIKAWA MASATAKA; SAWARAGI YURI; SHINKAWA HARUKA; FURUYA KEN'ICHI; YAMANO TAKASHI; HIRONO MASAFUMI; FUKUZAWA HIDEYA 日本植物生理学会年会要旨集 55th- 362 2014/03
- KATO AKIRA; FUKUI YUKI; ASHIDA HIROKI; AKASHI KIN'YA; KAJIKAWA MASATAKA; SHIGEOKA SHIGERU; YOKOTA AKIHO 日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2014- 2C04A08 (WEB ONLY) 2014/03
- CO2-requiring mutants defective in CCM-induction generated by high frequency transformation with square electric pulsesLianyong Wang; Takashi Yamano; Masataka Kajikawa; Masafumi Hirono; Hiro Iguchi; Hideya Fukuzawa 16th International Conference on the Cell and Molecular Biology of Chlamydomonas(Pacific Grove, CA, USA) 2014
- Characterization of low-TAG accumulating mutant in Chlamydomonas reinhardtiiMasataka Kajikawa; Yuri Sawaragi; Haruka Shinkawa; Takashi Yamano; Masafumi Hirono; Naoki Sato; Hideya Fukuzawa 16th International Conference on the Cell and Molecular Biology of Chlamydomonas(Pacific Grove, CA, USA) 2014
- セルソーターを用いた光独立栄養条件下における脂質蓄積異常変異株の解析新川 はるか; 梶川 昌孝; 福澤 秀哉 第11回 クラミドモナス研究会(高知市文化プラザかるぽーと) 2014
- トリアシルグリセロールおよびデンプン蓄積の新奇制御因子TAR1の単離梶川 昌孝; 椹木 裕里; 新川 はるか; 山野 隆志; 安藤 晶; 加藤 美砂子; 廣野 雅文; 佐藤 直樹; 福澤 秀哉 第11回 クラミドモナス研究会(高知市文化プラザかるぽーと) 2014
- トリアシルグリセロールおよびデンプン蓄積の新奇制御因子 TAR1 の単離と機能解析梶川 昌孝; 椹木 裕里; 新川 はるか; 山野 隆志; 安藤 晶; 加藤 美砂子; 廣野 雅文; 佐藤 直樹; 福澤 秀哉 第27回 植物脂質シンポジウム(静岡市産学交流センター) 2014
- KONOHIRA SHIGEKO; KAJIKAWA MASATAKA; FUKUZAWA HIDEYA 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 31st- 202 2013/08
- FURUYA KEN'ICHI; KUBO TAKEAKI; KAJIKAWA MASATAKA; FUKUZAWA HIDEYA 日本植物学会大会研究発表記録 77th- 144 2013/08
- SHIMOYAMA MIKI; ANDO AKIRA; KAJIKAWA MASATAKA; FUKUZAWA HIDEYA; KATO MISAKO 日本植物生理学会年会要旨集 54th- 268 2013/03
- KAJIKAWA MASATAKA; SAWARAGI YURI; SAWARAGI YURI; MIZUHARA HATSUE; MIZUHARA HATSUE; FUKUZAWA HIDEYA 日本植物生理学会年会要旨集 54th- 145 2013/03
- 田中伸裕; 浦口晋平; 齋藤彰宏; 梶川昌孝; 笠井光治; 藤原徹 第54回日本植物生理学会年会、岡山大学、岡山県 PF040 (0515) 54th- 244 2013/03
- KAJIKAWA MASATAKA; KINOHIRA SEIKO; SHIMOYAMA MIKI; KATO MISAKO; FUKUZAWA HIDEYA 日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2013- 3A46P14 (WEB ONLY) 2013/03
- セルソーターを用いた脂質蓄積異常変異株の単離椹木 祐里; 新川 はるか; 山野 隆志; 梶川 昌孝; 福澤 秀哉 第10回クラミドモナス研究会 -微細藻類研究のブレイクスルー-基礎生物学研究所、名古屋 2013
- 緑藻クラミドモナスにおける新規高CO2要求性変異株の単離の解析王 連勇; 山野 隆志; 舟津 尚子; 高根 俊輔; 福田有里; 梶川 昌孝; 廣野 雅文; 福澤 秀哉 第10回クラミドモナス研究会 -微細藻類研究のブレイクスルー-基礎生物学研究所、名古屋 2013
- スクアレンシンターゼを過剰発現させたクラミドモナスにおける代謝系の解析安藤晶; 下山未希; 梶川昌孝; 福澤秀哉; 加藤美砂子 第10回クラミドモナス研究会 -微細藻類研究のブレイクスルー-基礎生物学研究所、名古屋 2013
- FUKUZAWA HIDEYA; YAMANO TAKASHI; KAJIKAWA MASATAKA 光合成研究 22- (3) 174 -184 2012/12
- AKASHI KINYA; KAJIKAWA MASATAKA; OGATA YOSHIYUKI; SUHARSONO SONY; WIDYASTUTI UTUT; ADACHI NAOKI; KONDOH SHINJI; KIKUCHI JUN; YOKOTA AKIHO 日本植物生理学会年会要旨集 53rd- 191 2012/03
- 梶川昌孝; 齋藤彰宏; 浦口晋平; 藤原徹; 藤原徹 日本植物生理学会年会要旨集 53rd- 302 2012/03
- 明石欣也; 梶川昌孝; 尾形善之; SUHARSONO Sony; WIDYASTUTI Utut; 足立直樹; 近藤伸二; 菊地淳; 横田明穂 日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2012- WEB ONLY 3C01A09 2012/03
- 梶川昌孝; 尾形善之; SUHARSONO Sony; SUHARSONO Utut Widyastuti; 足立直樹; 近藤伸二; 菊地淳; 菊地淳; 菊地淳; 菊地淳; 横田明穂; 明石欣也 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 29th- 234 2011/09
- 加藤啓太; SEDDON Teoh; 庄司翼; 梶川昌孝; 原田和生; 平田收正; 橋本隆 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 29th- 136 2011/09
- 浦口晋平; 浦口晋平; 花岡秀樹; 齋藤彰宏; 齋藤彰宏; 梶川昌孝; 中川裕子; 中川裕子; 笠井光治; 笠井光治; 藤原徹; 藤原徹 日本土壌肥料学会講演要旨集 57- 76 2011/08
- 梶川昌孝; 尾形善之; SUHARSONO Sony; WIDYASTUTI Utut; 足立直樹; 近藤伸二; 菊地淳; 横田明穂; 明石欣也 日本植物生理学会年会要旨集 52nd- 136 2011/03
- 庄司翼; 梶川昌孝; 橋本隆 日本植物生理学会年会要旨集 52nd- 173 2011/03
- 梶川昌孝; 尾形善之; SUHARSONO Sony; WIDYASTUTI Utut; 足立直樹; 近藤伸二; 菊地淳; 横田明穂; 明石欣也 日本農芸化学会大会講演要旨集 2011- 306 2011/03
- 明石欣也; 梶川昌孝; 横田明穂 日本農芸化学会大会講演要旨集 2011- SHI65 2011/03
- 浦口晋平; 浦口晋平; 花岡秀樹; 齋藤彰宏; 齋藤彰宏; 梶川昌孝; 中川裕子; 中川裕子; 笠井光治; 笠井光治; 藤原徹; 藤原徹 日本土壌肥料学会講演要旨集,57,76 57- 2011
- Ogata Yoshiyuki; Kajikawa Masataka; Widyastuti Utut; Suharsono Sony; Adachi Naoki; Yokota Akiho; Kondo Shi; Akashi Kinya; Kikuchi Jun 日本生物工学会大会講演要旨集,63rd,233 63- 233 -233 2011
- バイオ燃料植物ヤトロファの登熟期果実における代謝制御梶川昌孝; 尾形善之; SUHARSONO Sony; SUHARSONO Utut Widyastuti; 足立直樹; 近藤伸二; 菊地淳; 菊地淳; 菊地淳; 菊地淳; 横田明穂; 明石欣也 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集,29th,234 2011
- ニコチン生合成に関与する新規酵素遺伝子候補の解析加藤啓太; SEDDON Teoh; 庄司翼; 梶川昌孝; 原田和生; 平田收正; 橋本隆 日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集,29th,136 2011
- Ogata Yoshiyuki; Kajikawa Masataka; Widyastuti Utut; Suharsono Sony; Adachi Naoki; Yokota Akiho; Kondo Shi; Akashi Kinya; Kikuchi Jun 日本生物工学会大会講演要旨集 63- 233 -233 2011
- 梶川昌孝; 横田明穂; 明石欣也 日本農芸化学会関西支部講演会講演要旨集 466th- 31 2010/10
- 尾形善之; 梶川昌孝; WIDYASTUTI Utut; SUHARSONO Sony; 足立直樹; 横田明穂; 近藤伸二; 明石欣也; 菊地淳 日本生物工学会大会講演要旨集 62nd- 123 2010/09
- KAJIKAWA Masataka; OGATA Yoshiyuki; WIDYASTUTI Utut; ADACHI Naoki; SUHARSONO Sony; KONDO Shinji; KIKUCHI Jun; YOKOTA Akiho; AKASHI Kinya 日本生物工学会大会講演要旨集 22- (0) 123 -123 2010/09
- 梶川昌孝; 尾形善之; WIDYASTUTI Utut; 足立直樹; SUHARSONO Sony; 近藤伸二; 菊地淳; 菊地淳; 菊地淳; 菊地淳; 横田明穂; 明石欣也 日本生物工学会大会講演要旨集 62nd- 123 -123 2010/09
- 梶川昌孝; 横田明穂; 明石欣也 日本農芸化学会大会講演要旨集 2010- 116 2010/03
- OGATA Yoshiyuki; KAJIKAWA Masataka; Widyastuti Utut; Suharsono Sony; ADACHI Naoki; YOKOTA Akiho; KONDO Shinji; AKASHI Kinya; KIKUCHI Jun 日本生物工学会大会講演要旨集 22- 123 -123 2010
- 内田英伸; 中谷内修; 竹村美保; 梶川昌孝; 大山莞爾 日本植物生理学会年会要旨集 49th- 110 -40 2008/03
- 梶川昌孝; 加藤彰; 橋本隆 日本植物生理学会年会要旨集 48th- 105 2007/03
- Masataka Kajikawa; Akira Kato; Takashi Hashimoto PLANT AND CELL PHYSIOLOGY 48- S33 -S33 2007
- 梶川昌孝; 松井啓祐; 大和勝幸; 田中良和; 福澤秀哉 日本農芸化学会大会講演要旨集 2006- 187 2006/03
- 梶川昌孝; 梶川昌孝; 大和勝幸; 阪井康能; 大山莞爾; 福澤秀哉; 河内孝之 日本農芸化学会大会講演要旨集 2006- 33 2006/03
- 濱田達朗; 大谷基泰; 金善衡; 内田英伸; 梶川昌孝; 大山莞爾; 島田多喜子 日本植物生理学会年会要旨集 47th- 277 -684 2006/03
- F Hamada; M Otani; SH Kim; H Uchida; M Kajikawa; K Ohyama; T Shimada PLANT AND CELL PHYSIOLOGY 47- S195 -S195 2006
- 八巻新; 大和勝幸; 淀谷幸平; 坂東弘樹; 梶川昌孝; 中山繁樹; 藤下まり子; 新井理; 小原雄治; 河内孝之; 福沢秀哉; 大山莞爾 日本分子生物学会年会講演要旨集 28th- 159 2005/11
- 梶川昌孝; 松井啓祐; 田中良和; 大和勝幸; 大山莞爾; 福沢秀哉; 河内孝之 日本農芸化学会大会講演要旨集 2005- 205 2005/03
- 梶川昌孝; 大和勝幸; 甲津嘉人; 庄司信一郎; 阪井康能; 福沢秀哉 日本分子生物学会年会プログラム・講演要旨集 27th- 850 2004/11
- 梶川昌孝; 大和勝幸; 甲津嘉人; 庄司信一郎; 野尻増俊; 桜谷英治; 清水昌; 阪井康能; 大山莞爾 日本農芸化学会大会講演要旨集 2004- 304 2004/03
- 上野華子; KIM G‐T; 塚谷裕一; 梶川昌孝; 大和勝幸; 大山莞爾; 小野莞爾; 高野博嘉 日本植物生理学会年会要旨集 42nd- 184 2002/03
- H Ueno; GT Kim; H Tsukaya; M Kajikawa; K Yamato; K Ohyama; K Ono; H Takano PLANT AND CELL PHYSIOLOGY 43- S138 -S138 2002
Lectures, oral presentations, etc.
- オートファジーを欠損した緑藻における栄養欠乏応答異常 [Invited]梶川 昌孝植物の栄養研究会第4回研究交流会 2018/09
- 藻類での有用脂質生産と脂質蓄積制御因子の同定 [Not invited]梶川昌孝日本農芸化学会関西支部講演会講演要旨集 2018/05
- リシノール酸生産により促進される実用珪藻の脂質蓄積 [Not invited]本庄智也; 梶川昌孝; 伊福健太郎; 菓子野康浩; 福澤秀哉日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2018/03
- イネOsTTAは複数の金属輸送体を正に制御する,金属吸収に必須な因子である [Not invited]田中伸裕; 浦口晋平; 梶川昌孝; 斎藤彰宏; 大森良弘; 藤原徹日本土壌肥料学会講演要旨集 2017/09
- オートファジーを欠損した緑藻における窒素欠乏応答異常 [Not invited]梶川昌孝; 山内万里花; 新川はるか; 田中学; 幡野恭子; 西村芳樹; 奥公秀; 阪井康能; 加藤美砂子; 加藤美砂子; 福澤秀哉日本植物学会大会研究発表記録 2017/09
- ムラサキのシコニン分泌系を用いた細胞外分泌脂質の解析 [Not invited]巽奏; 井坂夏海; 岡咲洋三; 佐藤繭子; 豊岡公徳; 梶川昌孝; 福澤秀哉; 斉藤和季; 斉藤和季; 矢崎一史日本植物細胞分子生物学会大会・シンポジウム講演要旨集 2017/08
- リシノール酸生産により促進される実用珪藻ツノケイソウの脂質蓄積 [Not invited]梶川昌孝; 伊福健太郎; 菓子野康浩; 福澤秀哉マリンバイオテクノロジー学会大会講演要旨集 2017/06
- PaIspSを用いた光合成藻類によるイソプレン生産の試み [Not invited]浅野卓也; 杉山暁史; 伊福健太郎; 奥村智憲; 梶川昌孝; 福澤秀哉; 矢崎一史日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2017/03
- タバコはいかにニコチンを合成するようになったのか?:二次代謝生合成系の分子進化 [Not invited]庄司翼; 梶川昌孝; 川口治彦; 橋本隆日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2017/03
- 実用珪藻ツノケイソウにおけるリシノール酸生産 [Not invited]梶川昌孝; 安部竜樹; 伊福健太郎; 古谷憲一; YAN Dongyi; 奥田知生; 安藤晃規; 岸野重信; 小川順; 福澤秀哉日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2017/03
- モデル緑藻および実用珪藻における代謝工学 [Not invited]梶川昌孝; 福澤秀哉マリンバイオテクノロジー学会大会講演要旨集 2016/05
- 地上部のMn濃度が低下したイネ変異株の解析 [Not invited]田中伸裕; 梶川昌孝; 斎藤彰宏; 大森良弘; 浦口晋平; 藤原徹日本土壌肥料学会講演要旨集 2015/09
- 珪藻Chaetoceros gracilisにおける有用脂肪酸リシノール酸の合成と蓄積条件 [Not invited]KAJIKAWA MASATAKA; ABE TATSUKI; IFUKU KENTARO; OGAWA JUN; FUKUZAWA HIDEYAマリンバイオテクノロジー学会大会講演要旨集 2015/05
- 窒素栄養欠乏下における緑藻クラミドモナスの脂質蓄積異常変異体tar1‐1の解析 [Not invited]KAJIKAWA MASATAKA; SAWARAGI YURI; SHINKAWA HARUKA; YAMANO TAKASHI; ANDO AKIRA; KATO MISAKO; HIRONO MASAFUMI; SATO NAOKI; FUKUZAWA HIDEYA日本植物生理学会年会要旨集 2015/03
- 実用珪藻Chaetoceros gracilisにおける代謝工学:リシノール酸生産株の作出と蓄積条件の検討 [Not invited]ABE TATSUKI; KAJIKAWA MASATAKA; IFUKU KENTARO; OGAWA JUN; FUKUZAWA HIDEYA日本農芸化学会大会講演要旨集(Web) 2015/03
- Functional analysis of drought-induced transcriptional regulatory factor CLMYB1 in the roots of wild watermelon [Not invited]Atsushi Kato; Masataka Kajikawa; Yoshihiko Nanasato; Hisashi Tsujimoto; Akiho Yokota; Kinya AkashiPlant and Animal Genome XXIII, San Diego, CA, USA 2015
- 油糧植物ヤトロファの登熟期果実の脂質代謝ダイナミクス [Not invited]2010年日本生物工学会(宮崎) 2010
- 野生種スイカにおいて乾燥ストレス応答性の根系発達機構を制御する遺伝子の探索 [Not invited]日本農芸化学会 大会(2010・東京) 2010
- 砂漠植物の根に特異的な乾燥ストレス応答遺伝子の探索 [Not invited]第51回日本植物生理学会年会 2010
Courses
- Plant Molecular BiologyPlant Molecular Biology Kindai University, Graduate School of Biology-Oriented Science and Technology
- Basic Science CommunicationIIBasic Science CommunicationII Kindai University, Faculty of Biology-Oriented Science and Technology
- Laboratory meeting and discussionLaboratory meeting and discussion Kindai University, Faculty of Biology-Oriented Science and Technology
- Basic BioinfomaticsIIBasic BioinfomaticsII Kindai University
- Basic Science CommunicationIBasic Science CommunicationI Kindai University, Faculty of Biology-Oriented Science and Technology
Research Themes
- Japan Society for the Promotion of Science:Grants-in-Aid for Scientific ResearchDate (from‐to) : 2020/04 -2023/03Author : 梶川 昌孝本研究では、ハイスループットな変異株スクリーニングによる順遺伝学解析系が確立されたモデル緑藻クラミドモナスを活用し、植物界で先駆けて従来型のオートファジー因子とは異なる新奇な細胞生存を制御する分子機構の包括的な解明を目指している。本年は、表現型の緩やかなオートファジー変異体(atg9)への更なる変異導入により選抜されたN・S・Pのいずれの栄養欠乏条件においても生存性が親株よりも早期に低下する変異体1C7および21B1変異株の解析を進めた。昨年度、これらの変異体ではそれぞれ異なるタンパク質リン酸化酵素遺伝子(1C7遺伝子、21B1遺伝子と名付けた)に挿入変異を持つことを明らかにしている。それぞれの変異体と野生型との交配により、ATG9への変異とそれぞれのタンパク質リン酸化酵素遺伝子の変異を分離した。1C7遺伝子あるいは21B1遺伝子にのみ変異をもつ子孫系統の生存率に関する表現型は、元の1C7および21B1変異株と同等であった。このことから、1C7および21B1変異株における生存率低下の表現型にはATG9の変異は寄与せず、もっぱら1C7遺伝子あるいは21B1遺伝子への変異によるものであることが示唆された。それぞれの単独変異体に野生型の1C7遺伝子および21B1遺伝子を導入すると変異表現型は野生型と同程度まで回復した。21B1遺伝子に蛍光タンパク質Venus遺伝子およびFLAGタグを連結したプラスミドを構築し、21B1遺伝子の単独変異体に導入したところ、表現型の回復とともにFLAG抗体を用いたウェスタン解析において予想サイズにシグナルが見られた。このシグナルの強度は栄養欠乏条件の切り替えの前後で変化しなかったことから、21B1タンパク質の発現レベルは栄養欠乏による制御を受けていないことが示唆された。今後、細胞内のVenus由来蛍光パターンの観察により細胞内局在の推定を進める。
- 長鎖不飽和脂肪酸およびエイコサノイドを実用生産するゼニゴケの開発生物系特定産業技術研究支援センター(BRAIN):スタートアップ総合支援プログラム(SBIR支援)Date (from‐to) : 2021/12 -2023/03
- Japan Society for the Promotion of Science:Grants-in-Aid for Scientific Research Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Areas (Research in a proposed research area)Date (from‐to) : 2019/04 -2021/03Author : 梶川 昌孝エストライド脂質は水酸基をもつ脂肪酸に他の脂肪酸が1分子エステル結合して連結した二量体構造を含む脂質である。エストライド脂質の生産と活用のため、ツノケイソウのエストライド化を担う生合成遺伝子を同定することを目的とした。そのため、ツノケイソウのcDNA発現ライブラリーを発現させた分裂酵母を用いた機能スクリーニングを行った。培養温度20℃での振盪培養において、4 mg/mlのリシノール酸を培養液に添加した場合には60日以上完全に生育を抑制することがわかった。cDNAライブラリーを導入した分裂酵母を4 mg/mlのリシノール酸添加条件でバルク培養したところ、38日後に増殖が始まり45日後には定常期まで達した。また細胞からはエストライドTAGが検出された。さらに増殖した細胞はツノケイソウの機能未知の遺伝子が導入されていることがわかった。 ツノケイソウの中性脂質蓄積量の底上げを目的とし、ノケイソウの変異株集団の中から脂質蓄積異常株を探索して新規制御因子の単離を試みた。ツノケイソウで順遺伝学的解析を行うための工夫として高発現プロモーターのゲノムへのランダム挿入によるアクティベーションタギングを用いた。高発現プロモーターとしてツノケイソウの内在性の硝酸還元酵素遺伝子CgNRのプロモーターを用いた。約5,000株の独立した形質転換株を単離し、ナイルレッド蛍光を指標に中性脂質蓄積異常を示す変異株、すなわち野生株と比べて脂質蓄積量の高い株および低い株の両方を選抜した。その結果、ナイルレッド蛍光値、中性脂質蓄積量がともに野生株と比べて約50%まで減少した46C1株が単離された。46C1株ではプロテアーゼドメインをもつ遺伝子の転写開始点上流に導入したプロモーター配列が順向きに挿入されていた。
- Japan Society for the Promotion of Science:Grants-in-Aid for Scientific ResearchDate (from‐to) : 2017/04 -2020/03Author : Masataka KajikawaWhen nutrient deprived, microalgae accumulate triacylglycerol (TAG) in lipid droplets. Dual-specificity kinase, TAG-accumulation-regulator-1 (TAR1) has been reported to regulate carbon metabolism in a green alga, Chlamydomonas reinhardtii. We identified total 426 TAR1-dependent phosphoproteins by phosphoproteomic analysis (Shinkawa et al. 2019). We focused a novel protein kinase from these TAR's target proteins. It prevents the excess accumulation of triacylglycerol (TAG) in C/N-stress conditions. Phosphorylation of the continuous serine residues is TAR1-dependently induced in the C/N-stress conditions. Expression of mutated protein with Alanine substitution of these Ser residues could not complement the mutant phenotype of the kinase, suggesting the importance of phosphorylation of these serine residues for function of the kinase. We also showed this kinase protein located at plasma membrane.
- 科学技術振興機構:戦略的な研究開発の推進 戦略的創造研究推進事業 ALCA(先端的低炭素化技術開発) 技術領域Date (from‐to) : 2011 -2018Author : 福澤秀哉; 山野隆志; 梶川昌孝; 菓子野 康浩; 伊福健太郎微細藻の一種、珪藻は地球上の光合成の25%を担っています。本研究では、独自開発の高効率形質転換系を用い、弱光適応型の珪藻の機能を強化して、明環境下でも迅速に増殖し、効率的な有用代謝産物・油脂生産をする細胞へと分子育種します。そして、社会実装のための関連技術を確立して、自然光による光合成を通じてCO2を有用物質に転換することにより、エコフレンドリーな低炭素化社会の実現を目指します。
- CO2濃縮強化によるスーパー光合成の実現と物質生産科学技術振興機構:戦略的な研究開発の推進 戦略的創造研究推進事業 ALCA(先端的低炭素化技術開発) 技術領域Date (from‐to) : 2011/10 -2016/03Author : 福澤秀哉; 加藤美砂子; 山野隆志; 梶川昌孝
- Japan Society for the Promotion of Science:Grants-in-Aid for Scientific ResearchDate (from‐to) : 2015 -2016Author : Kajikawa MasatakaWhen nutrient deprived, microalgae accumulate triacylglycerol (TAG) in lipid droplets. Dual-specificity kinase, TAG-accumulation-regulator-1 (TAR1) has been reported to regulate carbon metabolism in a green alga, Chlamydomonas reinhardtii. TAR1 is required for acetate-dependent TAG accumulation and degradation of chlorophyll and photosynthesis-related proteins in photomixotrophic nitrogen (N)-deficient conditions. We report that the tar1-1 mutant maintained high levels of cell viability and lower generation of H2O2 compared with wild-type (WT) cells in photoautotrophic N-deficient conditions. Mating efficiency and mRNA abundance of key regulators in gametogenesis were lower in tar1-1 than those in WT. In addition, tar1-1 accumulated higher levels of TAG and starch per cell volumes compared with WT. We identified total 426 TAR1-dependent phosphoproteins by phosphoproteomic analysis. Several protein kinases and enzymes related to N assimilation and carbon metabolism were included.
- Japan Society for the Promotion of Science:Grants-in-Aid for Scientific ResearchDate (from‐to) : 2013 -2014Author : KAJIKAWA MasatakaAlthough microalgae accumulate triacylglycerol (TAG) in response to N-deficient (-N) conditions, the regulatory mechanisms are poorly understood. I identified a kinase, TAG accumulation regulator 1 (TAR1), which is a member of dual-specificity tyrosine-phosphorylation-regulated kinase family in a green alga, Chlamydomonas reinhardtii. Kinase domain of TAR1 demonstrated auto- and trans-phosphorylation activities. A tar1-1 mutant accumulated TAG to levels 0.1-fold of those of a wild-type strain in -N conditions. In -N conditions, tar1-1 maintained chlorophyll and photosynthetic activity. In -N conditions, global changes in expression levels of -N responsive genes in N assimilation and tetrapyrrole metabolism were noted between tar1-1 and wild-type cells. These results indicated that TAR1 is a regulator of TAG accumulation in -N conditions, and it functions in cell growth and repression of photosynthesis in -N conditions.
- 文部科学省:科学研究費補助金(研究活動スタート支援)Date (from‐to) : 2012 -2012Author : 梶川 昌孝クラミドモナスに対する高感染性アグロバクテリウム株の選定と形質転換条件の最適化クラミドモナス細胞核中の染色体DNAにT-DNAが安定に組み込まれる条件をつきとめるため、以下の諸条件を組み合わせてアグロバクテリウム感染の最適化を試みた。a, 高感染性アグロバクテリウム菌株の選定 単子葉植物や酵母などアグロバクテリウムの宿主範囲外生物の形質転換で使用されている高感染性(supervirulent)菌株を用いて、安定形質転換体が取得できるかを調べ、最も頻度が高く薬剤耐性能を示す菌株を絞り込んだ。b, 感染に最適なクラミドモナス株と細胞ステージの決定 クラミドモナスには細胞壁が厚い系統と薄い系統が存在する。細胞壁の厚さが感染効率に影響するかを細胞壁の厚さの異なる3種類の系統(C9、5D、cw-15)を用いて検証した。しかし、細胞壁の有無は薬剤耐性個体の出現頻度に影響を及ぼさなかった。c, 適切な選抜マーカー遺伝子とアグロバクテリウムの除菌薬剤の選定 クラミドモナスの従来法による形質転換体選抜にはaph7’遺伝子(ハイグロマイシン選抜)、aphVIII 遺伝子(パラモマイシン選抜)、ble遺伝子(ゼオシン選抜)などの選抜システムが使用されている。これらの薬剤選抜系の中でアグロバクテリウム法に適したものを調べるため、各遺伝子発現カセットを既にバイナリーベクターpCAMBIA-1300に組み込み、感染実験に用いた。また、感染後のアグロバクテリウム菌体の除菌に、meropenemやmoxalactamといった新規eta-lactam系抗生物質がクラミドモナスでも効果的であることが示された。
- Japan Society for the Promotion of Science:Grants-in-Aid for Scientific Research Grant-in-Aid for Scientific Research (B)Date (from‐to) : 2010 -2012Author : FUKUZAWA Hideya; YAMANO Takashi; KAJIKAWA MasatakaAlgal photosynthesis, which is base for production of bio-materials, is supported by carbon-concentrating mechanism (CCM). To identify CCM-related genes, RNA-seq analyses using different RNA samples prepared from cells cultured in various stress conditions including low-CO2 or nitrogen starved conditions. Using RNA-seq data and genomic sequence data, we have developed a new expression database for green alga, Chlamydomonas reinhardtii. Genes which are induced in low-CO2 stress conditions, nitrogen-starved conditions, and anaerobic conditions were identified by comparing the RNA expression profiles. Several CCM-related genes were artificially overexpressed in transgenic Chlamydomonas cells and the photosynthetic characteristics were show to be significantly improved than wild type cells.
- イネにおける栄養要求性変異株の遺伝子解析Date (from‐to) : 2011
- 野生種スイカにおける乾燥ストレス耐性メカニズムの解明Date (from‐to) : 2008
- Characterization of Nicotine BiosynthesisDate (from‐to) : 2005
- タバコにおけるニコチン生合成経路の解明
- ゼニゴケおよびクラミドモナスの高度不飽和脂肪酸生合成酵素遺伝子の同定
Industrial Property Rights
- 特開WO/2007/072224:Increasing levels of nicotine alkaloids. 2007/06/28NARA INSTITUTE OF, SCIENCE AND TECHNOLOGY, HASHIMOTO, Takashi, KAJIKAWA, M
- 特開WO/2006/006710:Polypeptide having Δ5 fatty acid unsaturating activity, polynucleotide coding for the polypeptide, and use thereof. 2006/01/19SUNTORY LIMITED, FUKUZAWA, Hideya、YAMATO, Katsuyuki, KAJIKAWA, Masataka