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齋藤　貴宗 （サイトウ　タカムネ）

  • 生物理工学部 遺伝子工学科　准教授
Last Updated :2024/05/19

コミュニケーション情報 byコメンテータガイド

  • コメント

    不妊やダウン症、ガンなどの染色体異常疾患の原因となる組換えの異常を防ぐため、遺伝解析に最適のモデル生物である線虫を用いて、組換えを中心とした染色体動態の分子機構の解明をめざします。

研究者情報

学位

  • 博士（理学）（2006年03月 大阪大学）

ホームページURL

科研費研究者番号

  • 60741494

J-Global ID

プロフィール

  • 線虫を使って、減数分裂期の染色体動態の分子メカニズムを研究しています。減数分裂期組換えに異常のある変異体を取得し、その表現型解析や原因遺伝子産物の機能解析を行います。高解像度蛍光顕微鏡を用いた染色体ダイナミクスの解析やSNPマーカーを用いた組換え頻度の測定などを行う事で、ホリデイジャンクションと呼ばれる組換え中間体を解離させるのに必要な多重ヌクレエース複合体（HIM-18/SLX4, SLX-1, MUS-81, XPF-1）を発見しました。今後の課題は、HIM-18複合体がどのように交差型組換えの数を分布を制御しているのかを解明することです。我々の研究は染色体不安定性を伴う癌の発症メカニズムや老化、不妊の原因解明につながります。

研究キーワード

  • 減数分裂   減数分裂組換え   交差制御   ホリデイジャンクション   ホリデイジャンクション解離酵素   構造特異的核酸分解酵素   相同組換え   ゲノム不安定性   早期老化症   ブルーム症候群   色素性乾皮症   ファンコニ貧血   DNA修復   染色体動態   ゲノム統合性   体細胞分裂   RNA干渉   P 顆粒   

現在の研究分野（キーワード）

    不妊やダウン症、ガンなどの染色体異常疾患の原因となる組換えの異常を防ぐため、遺伝解析に最適のモデル生物である線虫を用いて、組換えを中心とした染色体動態の分子機構の解明をめざします。

研究分野

  • ライフサイエンス / 遺伝学
  • ライフサイエンス / 分子生物学
  • ライフサイエンス / 細胞生物学
  • ライフサイエンス / ゲノム生物学
  • ライフサイエンス / 進化生物学
  • ライフサイエンス / 発生生物学
  • ライフサイエンス / 腫瘍生物学 / DNA修復

経歴

  • 2024年04月 - 現在  近畿大学生物理工学部 遺伝子工学科准教授
  • 2018年04月 - 2024年03月  近畿大学生物理工学部 遺伝子工学科講師
  • 2015年06月 - 2018年03月  ハーバード大学医学部遺伝学部門リサーチアソシアイト
  • 2015年04月 - 2016年03月  近畿大学先端技術総合研究所研究員
  • 2014年08月 - 2015年03月  東北大学加齢医学研究所特命助教
  • 2006年04月 - 2014年07月  ハーバード大学医学部遺伝学部門リサーチフェロー
  • 2007年04月 - 2009年03月  日本学術振興会海外特別研究員（ハーバード大学医学部）
  • 2006年04月 - 2007年03月  日本学術振興会特別研究員（PD）（ハーバード大学医学部）
  • 2005年04月 - 2006年03月  日本学術振興会特別研究員（DC2）（大阪大学大学院）

学歴

  • 2003年04月 - 2006年03月   大阪大学大学院   理学研究科   生物科学専攻 博士後期課程
  • 2001年04月 - 2003年03月   大阪大学大学院   理学研究科   生物科学専攻 博士前期課程
  • 1997年04月 - 2001年03月   近畿大学   生物理工学部   遺伝子工学科

所属学協会

  • 日本分子生物学会   米国遺伝学会   

研究活動情報

論文

  • Marina Martinez-Garcia; Pedro Robles Naharro; Marnie W. Skinner; Kerstin A. Baran; Laura I. Lascarez-Lagunas; Saravanapriah Nadarajan; Nara Shin; Carlos G. Silva-García; Takamune T. Saito; Sara Beese-Sims; Brianna N. Diaz-Pacheco; Elizaveta Berson; Ana B. Castañer; Sarai Pacheco; Enrique Martinez-Perez; Philip W. Jordan; Monica P. Colaiácovo
    PLOS Genetics 19 2 e1010666 - e1010666 2023年02月 [査読有り]
     
    Chromosome movements and licensing of synapsis must be tightly regulated during early meiosis to ensure accurate chromosome segregation and avoid aneuploidy, although how these steps are coordinated is not fully understood. Here we show that GRAS-1, the worm homolog of mammalian GRASP/Tamalin and CYTIP, coordinates early meiotic events with cytoskeletal forces outside the nucleus. GRAS-1 localizes close to the nuclear envelope (NE) in early prophase I and interacts with NE and cytoskeleton proteins. Delayed homologous chromosome pairing, synaptonemal complex (SC) assembly, and DNA double-strand break repair progression are partially rescued by the expression of human CYTIP in gras-1 mutants, supporting functional conservation. However, Tamalin, Cytip double knockout mice do not exhibit obvious fertility or meiotic defects, suggesting evolutionary differences between mammals. gras-1 mutants show accelerated chromosome movement during early prophase I, implicating GRAS-1 in regulating chromosome dynamics. GRAS-1-mediated regulation of chromosome movement is DHC-1-dependent, placing it acting within the LINC-controlled pathway, and depends on GRAS-1 phosphorylation at a C-terminal S/T cluster. We propose that GRAS-1 coordinates the early steps of homology search and licensing of SC assembly by regulating the pace of chromosome movement in early prophase I.
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  • Saravanapriah Nadarajan; Elisabeth Altendorfer; Takamune T. Saito; Marina Martinez-Garcia; Monica P. Colaiácovo
    Proceedings of the National Academy of Sciences 118 17 e2016363118 - e2016363118 2021年04月 [査読有り]
     
    The position of recombination events established along chromosomes in early prophase I and the chromosome remodeling that takes place in late prophase I are intrinsically linked steps of meiosis that need to be tightly regulated to ensure accurate chromosome segregation and haploid gamete formation. Here, we show that RAD-51 foci, which form at the sites of programmed meiotic DNA double-strand breaks (DSBs), exhibit a biased distribution toward off-centered positions along the chromosomes in wild-type Caenorhabditis elegans, and we identify two meiotic roles for chromatin-associated protein HIM-17 that ensure normal chromosome remodeling in late prophase I. During early prophase I, HIM-17 regulates the distribution of DSB-dependent RAD-51 foci and crossovers on chromosomes, which is critical for the formation of distinct chromosome subdomains (short and long arms of the bivalents) later during chromosome remodeling. During late prophase I, HIM-17 promotes the normal expression and localization of protein phosphatases GSP-1/2 to the surface of the bivalent chromosomes and may promote GSP-1 phosphorylation, thereby antagonizing Aurora B kinase AIR-2 loading on the long arms and preventing premature loss of sister chromatid cohesion. We propose that HIM-17 plays distinct roles at different stages during meiotic progression that converge to promote normal chromosome remodeling and accurate chromosome segregation.
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  • Simon Yuan Wang; Hui Mao; Hiroki Shibuya; Satoru Uzawa; Zach Klapholz O'Brown; Sage Wesenberg; Nara Shin; Takamune T Saito; Jinmin Gao; Barbara J Meyer; Monica P Colaiácovo; Eric Lieberman Greer
    PLoS genetics 15 7 e1008252  2019年07月 [査読有り]
     
    The biological roles of nucleic acid methylation, other than at the C5-position of cytosines in CpG dinucleotides, are still not well understood. Here, we report genetic evidence for a critical role for the putative DNA demethylase NMAD-1 in regulating meiosis in C. elegans. nmad-1 mutants have reduced fertility. They show defects in prophase I of meiosis, which leads to reduced embryo production and an increased incidence of males due to defective chromosomal segregation. In nmad-1 mutant worms, nuclear staging beginning at the leptotene and zygotene stages is disorganized, the cohesin complex is mislocalized at the diplotene and diakinesis stages, and chromosomes are improperly condensed, fused, or lost by the end of diakinesis. RNA sequencing of the nmad-1 germline revealed reduced induction of DNA replication and DNA damage response genes during meiosis, which was coupled with delayed DNA replication, impaired DNA repair and increased apoptosis of maturing oocytes. To begin to understand how NMAD-1 regulates DNA replication and repair, we used immunoprecipitation and mass spectrometry to identify NMAD-1 binding proteins. NMAD-1 binds to multiple proteins that regulate DNA repair and replication, including topoisomerase TOP-2 and co-localizes with TOP-2 on chromatin. Moreover, the majority of TOP-2 binding to chromatin depends on NMAD-1. These results suggest that NMAD-1 functions at DNA replication sites to regulate DNA replication and repair during meiosis.
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  • Li Q; Saito TT; Martinez-Garcia M; Deshong AJ; Nadarajan S; Lawrence KS; Checchi PM; Colaiacovo MP; Engebrecht J
    PLoS Genetics 14 11 e1007701  2018年11月 [査読有り]
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  • Takamune T. Saito; Monica P. Colaiacovo
    Cold Spring Harbor Symposium Quantitative Biology 82 223 - 234 2017年12月 [査読有り][招待有り]
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  • Saito TT; Colaiacovo MP
    Worm 3 1 e28233  2014年03月 [査読有り][招待有り]
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  • Takamune T. Saito; Doris Y. Lui; Hyun-Min Kim; Katherine Meyer; Monica P. Colaiacovo
    PLOS GENETICS 9 7 e1003586  2013年07月 [査読有り]
     
    The number and distribution of crossover events are tightly regulated at prophase of meiosis I. The resolution of Holliday junctions by structure-specific endonucleases, including MUS-81, SLX-1, XPF-1 and GEN-1, is one of the main mechanisms proposed for crossover formation. However, how these nucleases coordinately resolve Holliday junctions is still unclear. Here we identify both the functional overlap and differences between these four nucleases regarding their roles in crossover formation and control in the Caenorhabditis elegans germline. We show that MUS-81, XPF-1 and SLX-1, but not GEN-1, can bind to HIM-18/SLX4, a key scaffold for nucleases. Analysis of synthetic mitotic defects revealed that MUS-81 and SLX-1, but not XPF-1 and GEN-1, have overlapping roles with the Bloom syndrome helicase ortholog, HIM-6, supporting their in vivo roles in processing recombination intermediates. Taking advantage of the ease of genetic analysis and high-resolution imaging afforded by C. elegans, we examined crossover designation, frequency, distribution and chromosomal morphology in single, double, triple and quadruple mutants of the structure-specific endonucleases. This revealed that XPF-1 functions redundantly with MUS-81 and SLX-1 in executing crossover formation during meiotic double-strand break repair. Analysis of crossover distribution revealed that SLX-1 is required for crossover suppression at the center region of the autosomes. Finally, analysis of chromosome morphology in oocytes at late meiosis I stages uncovered that SLX-1 and XPF-1 promote meiotic chromosomal stability by preventing formation of chromosomal abnormalities. We propose a model in which coordinate action between structure-specific nucleases at different chromosome domains, namely MUS-81, SLX-1 and XPF-1 at the arms and SLX-1 at the center region, exerts positive and negative regulatory roles, respectively, for crossover control during C. elegans meiosis.
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  • Takamune T. Saito; Firaz Mohideen; Katherine Meyer; J. Wade Harper; Monica P. Colaiacovo
    PLOS GENETICS 8 8 e1002888  2012年08月 [査読有り]
     
    Although the SLX4 complex, which includes structure-specific nucleases such as XPF, MUS81, and SLX1, plays important roles in the repair of several kinds of DNA damage, the function of SLX1 in the germline remains unknown. Here we characterized the endonuclease activities of the Caenorhabditis elegans SLX-1-HIM-18/SLX-4 complex co-purified from human 293T cells and determined SLX-1 germline function via analysis of slx-1(tm2644) mutants. SLX-1 shows a HIM-18/SLX-4-dependent endonuclease activity toward replication forks, 59-flaps, and Holliday junctions. slx-1 mutants exhibit hypersensitivity to UV, nitrogen mustard, and camptothecin, but not gamma irradiation. Consistent with a role in DNA repair, recombination intermediates accumulate in both mitotic and meiotic germ cells in slx-1 mutants. Importantly, meiotic crossover distribution, but not crossover frequency, is altered on chromosomes in slx-1 mutants compared to wild type. This alteration is not due to changes in either the levels or distribution of double-strand breaks (DSBs) along chromosomes. We propose that SLX-1 is required for repair at stalled or collapsed replication forks, interstrand crosslink repair, and nucleotide excision repair during mitosis. Moreover, we hypothesize that SLX-1 regulates the crossover landscape during meiosis by acting as a noncrossover-promoting factor in a subset of DSBs.
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  • Kristina Schild-Pruefert; Takamune T. Saito; Sarit Smolikov; Yanjie Gu; Marina Hincapie; David E. Hill; Marc Vidal; Kent McDonald; Monica P. Colaiacovo
    GENETICS 189 2 411 - U437 2011年10月 [査読有り]
     
    Four different SYP proteins (SYP-1, SYP-2, SYP-3, and SYP-4) have been proposed to form the central region of the synaptonemal complex (SC) thereby bridging the axes of paired meiotic chromosomes in Caenorhabditis elegans. Their interdependent localization suggests that they may interact within the SC. Our studies reveal for the first time how these SYP proteins are organized in the central region of the SC. Yeast two-hybrid and co-immunoprecipitation studies show that SYP-1 is the only SYP protein that is capable of homotypic interactions, and is able to interact with both SYP-2 and SYP-3 directly, whereas SYP-2 and SYP-3 do not seem to interact with each other. Specifically, the coiled-coil domain of SYP-1 is required both for its homotypic interactions and its interaction with the C-terminal domain of SYP-2. Meanwhile, SYP-3 interacts with the C-terminal end of SYP-1 via its N-terminal domain. Immunoelectron microscopy analysis provides insight into the orientation of these proteins within the SC. While the C-terminal domain of SYP-3 localizes in close proximity to the chromosome axes, the N-terminal domains of both SYP-1 and SYP-4, as well as the C-terminal domain of SYP-2, are located in the middle of the SC. Taking into account the different sizes of these proteins, their interaction abilities, and their orientation within the SC, we propose a model of how the SYP proteins link the homologous axes to provide the conserved structure and width of the SC in C. elegans.
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  • Saito TT; Colaiácovo MP
    PLoS Genetics 7 2 e1002006  2 2011年02月 [査読有り][招待有り]
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  • Takahiro Tougan; Takashi Kasama; Ayami Ohtaka; Daisuke Okuzaki; Takamune T. Saito; Paul Russell; Hiroshi Nojima
    CELL CYCLE 9 23 4688 - 4702 2010年12月 [査読有り]
     
    Mek1 is a Chk2/Rad53/Cds1-related protein kinase that is required for proper meiotic progression of Schizosaccharomyces pombe. However, the molecular mechanisms of Mek1 regulation and Mek1 phosphorylation targets are unclear. Here, we report that Mek1 is phosphorylated at serine-12 (S12), S14 and threonine-15 (T15) by Rad3 (ATR) and/or Tel1 (ATM) kinases that are activated by meiotic programmed double-strand breaks (DSBs). Mutations of these sites by alanine replacement caused abnormal meiotic progression and recombination rates. Phosphorylation of these sites triggers autophosphorylation of Mek1; indeed, alanine replacement mutations of Mek1-T318 and -T322 residues in the activation loop of Mek1 reduced Mek1 kinase activity and meiotic recombination rates. Substrates of Mek1 include Mus81-T275, Rdh54-T6 and Rdh54-T673. Mus81-T275 is known to regulate the Mus81 function in DNA cleavage, whereas Rdh54-T6A/T673A mutant cells showed abnormal meiotic recombination. Taken together, we conclude that the phosphorylation of Mek1 by Rad3 or Tel1, Mek1 autophosphorylation and Mus81 or Rdh54 phosphorylation by Mek1 regulate meiotic progression in S. pombe.
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  • Agata Smogorzewska; Rohini Desetty; Takamune T. Saito; Michael Schlabach; Francis P. Lach; Mathew E. Sowa; Alan B. Clark; Thomas A. Kunkel; J. Wade Harper; Monica P. Colaiacovo; Stephen J. Elledge
    MOLECULAR CELL 39 1 36 - 47 2010年07月 [査読有り]
     
    The Fanconi anemia (FA) pathway is responsible for interstrand crosslink repair. At the heart of this pathway is the FANCI-FAND2 (ID) complex, which, upon ubiquitination by the FA core complex, travels to sites of damage to coordinate repair that includes nucleolytic modification of the DNA surrounding the lesion and translesion synthesis. How the ID complex regulates these events is unknown. Here we describe a shRNA screen that led to the identification of two nucleases necessary for crosslink repair, FAN1 (KIAA1018) and EXDL2. FAN1 colocalizes at sites of DNA damage with the ID complex in a manner dependent on FAN1's ubiquitin-binding domain (UBZ), the ID complex, and monoubiquitination of FANCD2. FAN1 possesses intrinsic 5'-3' exonuclease activity and endonuclease activity that cleaves nicked and branched structures. We propose that FAN1 is a repair nuclease that is recruited to sites of crosslink damage in part through binding the ubiquitinated ID complex through its UBZ domain.
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  • Takamune T. Saito; Jillian L. Youds; Simon J. Boulton; Monica P. Colaiacovo
    PLOS GENETICS 5 11 e1000735  2009年11月 [査読有り]
     
    Homologous recombination (HR) is essential for the repair of blocked or collapsed replication forks and for the production of crossovers between homologs that promote accurate meiotic chromosome segregation. Here, we identify HIM-18, an ortholog of MUS312/Slx4, as a critical player required in vivo for processing late HR intermediates in Caenorhabditis elegans. DNA damage sensitivity and an accumulation of HR intermediates (RAD-51 foci) during premeiotic entry suggest that HIM-18 is required for HR-mediated repair at stalled replication forks. A reduction in crossover recombination frequencies-accompanied by an increase in HR intermediates during meiosis, germ cell apoptosis, unstable bivalent attachments, and subsequent chromosome nondisjunction-support a role for HIM-18 in converting HR intermediates into crossover products. Such a role is suggested by physical interaction of HIM-18 with the nucleases SLX-1 and XPF-1 and by the synthetic lethality of him-18 with him-6, the C. elegans BLM homolog. We propose that HIM-18 facilitates processing of HR intermediates resulting from replication fork collapse and programmed meiotic DSBs in the C. elegans germline.
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  • Ayami Ohtaka; Daisuke Okuzaki; Takamune T. Saito; Hiroshi Nojima
    EUKARYOTIC CELL 6 6 971 - 983 2007年06月 [査読有り]
     
    Some meiosis-specific proteins of Schizosaccharomyces pombe harbor coiled-coil motifs and play essential roles in meiotic progression. Here we describe Mcp4, a novel meiosis-specific protein whose expression is abruptly induced at the horsetail phase and which remains expressed until sporulation is finished. Fluorescence microscopic analysis revealed that Mcp4 alters its subcellular localization during meiosis in a manner that partially resembles the movement of F-actin during meiosis. Mcp4 and F-actin never colocalize; rather, they are located in a side-by-side manner. When forespore membrane formation begins at metaphase II, the Mcp4 signals assemble at the lagging face of the dividing nuclei. At this stage, they are sandwiched between F-actin and the nucleus. Mcp4, in turn, appears to sandwich F-actin with Meu14. In mcp4 Delta cells at anaphase II, the F-actin, which is normally dumbbell-shaped, adopts an abnormal balloon shape. Spores of mcp4 Delta cells were sensitive to NaCl, although their shape and viability were normal. Taken together, we conclude that Mcp4 plays a role in the accurate positioning of F-actin during S. pombe meiosis.
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  • Ayami Ohtaka; Takamune T. Saito; Daisuke Okuzaki; Hiroshi Nojima
    CELL DIVISION 2 14 2007年 [査読有り][招待有り]
     
    Many meiosis-specific proteins in Schizosaccharomyces pombe contain coiled-coil motifs which play essential roles for meiotic progression. For example, the coiled-coil motifs present in Meu13 and Mcp7 are required for their function as a putative recombinase cofactor complex during meiotic recombination. Mcp6/Hrs1 and Mcp5/Num1 control horsetail chromosome movement by astral microtubule organization and anchoring dynein respectively. Dhc1 and Ssm4 are also required for horsetail chromosome movement. It is clear from these examples that the coiled-coil motif in these proteins plays an important role during the progression of cells through meiosis. However, there are still many unanswered questions on how these proteins operate. In this paper, we briefly review recent studies on the meiotic coiled-coil proteins in Sz. pombe.
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  • Takashi Kasama; Akira Shigehisa; Aiko Hirata; Takamune T. Saito; Takahiro Tougan; Daisuke Okuzaki; Hiroshi Nojima
    EUKARYOTIC CELL 5 8 1301 - 1313 2006年08月 [査読有り]
     
    We report here a functional analysis of spo5(+)(mug12(+)) of Schizosaccharomyces pombe, which encodes a putative RNA-binding protein. The disruption of spo5(+) caused abnormal sporulation, generating inviable spores due to failed forespore membrane formation and the absence of a spore wall, as determined by electron microscopy. Spo5 regulates the progression of meiosis I because spo5 mutant cells display normal premeiotic DNA synthesis and the timely initiation of meiosis I but they show a delay in the peaking of cells with two nuclei, abnormal tyrosine 15 dephosphorylation of Cdc2, incomplete degradation of Cdc13, retarded formation and repair of double strand breaks, and a reduced frequency of intragenic recombination. Immunostaining showed that Spo5-green fluorescent protein (GFP) appeared in the cytoplasm at the horsetail phase, peaked around the metaphase I to anaphase I transition, and suddenly disappeared after anaphase II. Images of Spo5-GFP in living cells revealed that Spo5 forms a dot in the nucleus at prophase I that colocalized with the Mei2 dot. Unlike the Mei2 dot, however, the Spo5 dot was observed even in sme2 Delta cells. Taken together, we conclude that Spo5 is a novel regulator of meiosis I and that it may function in the vicinity of the Mei2 dot.
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  • TT Saito; D Okuzaki; H Nojima
    JOURNAL OF CELL BIOLOGY 173 1 27 - 33 2006年04月 [査読有り]
     
    During meiotic prophase I of the Fission yeast Schizosoccharomyces pombe, oscillatory nuclear movement occurs. This promotes homologous chromosome pairing and recombination and involves cortical dynein, which plays a pivotal role by generating a pulling force with the help of an unknown dynein anchor. We show that Mcp5, the homologue of the budding yeast dynein anchor Num1, may be this putative dynein anchor. mcp5(+) is predominantly expressed during meiotic prophase, and GFP-Mcp5 localizes at the cell cortex. Moreover, the mcpS Delta strain locks the oscillatory nuclear movement. Accordingly, homologous pairing and recombination rates of the mcp5 Delta strain are significantly reduced. Furthermore, the cortical localization of dynein heavy chain 1 appears to be reduced in mcp5 Delta cells. Finally, the full function of Mcp5 requires its coiled-coil and pleckstrin homology (PH) domains. Our results suggest that Mcp5 localizes at the cell cortex through its PH domain and functions as a dynein anchor, thereby facilitating nuclear oscillation.
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  • TT Saito; T Tougan; D Okuzaki; T Kasama; H Nojima
    JOURNAL OF CELL SCIENCE 118 2 447 - 459 2005年01月 [査読有り]
     
    We report here that a meiosis-specific gene of Schizosaccharomyces pombe denoted mcp(6+) (meiotic coiled-coil protein) encodes a protein that is required for the horsetail movement of chromosomes at meiosis I. The mcp(6+) gene is specifically transcribed during the horsetail phase. Green fluorescent protein (GFP)-tagged Mcp6 appears at the start of karyogamy, localizes to the spindle-pole body (SPB) and then disappears before chromosome segregation at meiosis I. In the mcp6Delta strain, the horsetail movement was either hampered (zygotic meiosis) or abolished (azygotic meiosis) and the pairing of homologous chromosomes was impaired. Accordingly, the allelic recombination rates of the mcp6Delta strain were only 10-40% of the wild-type rates. By contrast, the ectopic recombination rate of the mcp6Delta strainwas twice the wildtype rate. This is probably caused by abnormal homologous pairing in mcp6Delta cells because of aberrant horsetail movement. Fluorescent microscopy indicates that SPB components such as Sad1, Kms1 and Spo15 localize normally in mcp6Delta cells. Because Taz1 and Swi6 also localized with Sad1 in mcp6Delta cells, Mcp6 is not required for telomere clustering. In a taz1Delta strain, which does not display telomere clustering, and the dhc1-d3 mutant, which lacks horsetail movement, Mcp6 localized with Sad1 normally. However, we observed abnormal astral microtubule organization in mcp6Delta cells. From these results, we conclude that Mcp6 is necessary for neither SPB organization nor telomere clustering, but is required for proper astral microtubule positioning to maintain horsetail movement.
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  • TT Saito; T Tougan; T Kasama; D Okuzaki; H Nojima
    NUCLEIC ACIDS RESEARCH 32 11 3325 - 3339 2004年06月 [査読有り]
     
    We previously showed that Meu13 of Schizosaccharomyces pombe functions in homologous pairing and recombination at meiosis I. Here we show that a meiosis-specific gene encodes a coiled-coil protein that complexes with Meu13 during meiosis in vivo. This gene denoted as mcp7(+) (after meiotic coiled-coil protein) is an ortholog of Mnd1 of Saccharomyces cerevisiae. Mcp7 proteins are detected on meiotic chromatin. The phenotypes of mcp7Delta cells are similar to those of meu13Delta cells as they show reduced recombination rates and spore viability and produce spores with abnormal morphology. However, a delay in initiation of meiosis I chromosome segregation of mcp7Delta cells is not so conspicuous as meu13Delta cells, and no meiotic delay is observed in mcp7Deltameu13Delta cells. Mcp7 and Meu13 proteins depend on each other differently; Mcp7 becomes more stable in meu13Delta cells, whereas Meu13 becomes less stable in mcp7Delta cells. Genetic analysis shows that Mcp7 acts in the downstream of Dmc1, homologs of Escherichia coli RecA protein, for both recombination and subsequent sporulation. Taken together, we conclude that Mcp7 associates with Meu13 and together they play a key role in meiotic recombination.
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  • T Watanabe; K Miyashita; TT Saito; K Nabeshima; H Nojima
    DNA RESEARCH 9 6 209 - 215 2002年12月 [査読有り]
     
    We report here that 6.9% (68/987) of randomly selected cDNA clones from an S. pombe cDNA library lack apparently long open reading frames which we denote prl. One of them, prl1, was examined further because multiple bands were observed when it was used as a probe in northern blot analysis. These multiple bands appear to be derived from overlapping transcripts from both DNA strands, including non-coding RNAs and antisense RNAs in addition to mRNA. Such mechanisms may increase the transcriptional variation in S. pombe cells.
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  • T Watanabe; K Miyashita; TT Saito; T Yoneki; Y Kakihara; K Nabeshima; YA Kishi; C Shimoda; H Nojima
    NUCLEIC ACIDS RESEARCH 29 11 2327 - 2337 2001年06月 [査読有り]
     
    In order to isolate meiosis-specific genes in Schizosaccharomyces pombe, we have constructed a subtracted cDNA library enriched in clones whose expression is enhanced during meiosis induced by nitrogen starvation. Using northern blot analysis, we isolated 31 kinds of clones whose expression was induced in a meiosis/sporulation-specific manner. We comprehensively named them meu after meiotic expression upregulated, The transcription of 20 meu genes was found to be dependent on the mei4+ gene, which encodes a transcription factor required for the progression of meiosis, DNA sequencing indicated that most of the meu genes encode novel proteins, Notably, five of the meu genes harbor no apparent protein coding sequences, and the transcripts form stable hairpin structures, suggesting that they may generate non-coding RNAs or antisense RNAs, The results presented here imply that RNAs are also important for the comprehensive characterization of genomic expression.
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講演・口頭発表等

  • 構造特異的ヌクレエースHIM-18のUBZ4ドメイン欠損株の 解析  [通常講演]
    宮島溫人; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2024年01月 口頭発表（一般）
  • 幼虫の発育と減数分裂における構造特異的ヌクレースの役割  [通常講演]
    山本航暉; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2023年01月 口頭発表（一般）
  • 染色体対合異常と交差形成制御機構の関係  [通常講演]
    辻上太暉; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2023年01月 口頭発表（一般）
  • 線虫の染色対合異常による新規の交差形成制御機構  [通常講演]
    山本航暉; 齋藤貴宗
    第40回染色体ワークショップ、第20回核ダイナミクス研究会 2022年12月 口頭発表（一般）
  • 線虫の染色体対合異常による新規な交差形成制御機構  [通常講演]
    山本航暉; 南寛仁; 齋藤貴宗
    第94回日本遺伝学会大会 2022年09月 口頭発表（一般）
  • SLX-1は染色体中央領域で交差型組換えを抑制する  [通常講演]
    山本航暉; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2022年03月 口頭発表（一般）
  • 線虫の性染色体対合による常染色体交差の転換機構  [通常講演]
    南寛仁; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2022年03月 口頭発表（一般）
  • 線虫の性染色体対合異常による常染色体交差の転換機構  [通常講演]
    南寛仁; 山本航暉; 齋藤貴宗
    第39回染色体ワークショップ、第19回核ダイナミクス研究会 2021年12月 ポスター発表
  • 線虫HIM-17による第一減数分裂前期のニ価染色体形成機構  [通常講演]
    齋藤貴宗; Saravanapriah Nadarajan; Elizabeth Altendorfer; Marina Martine-Gracia; Monica P. Colaiacovo
    第39回染色体ワークショップ、第19回核ダイナミクス研究会 2021年12月 口頭発表（一般）
  • 線虫の性染色体対合異常による常染色体交差の転換機構  [通常講演]
    南寛仁; 山本航暉; 齋藤貴宗
    第44回日本分子生物学会年会 2021年12月 ポスター発表
  • 齋藤貴宗; Saravanapriah Nadarajan; Elisabeth Altendorfer; Marina Martinez-Garcia; Monica Colaiacovo
    第26回DNA複製・組換え・修復ワークショップ 2021年10月 口頭発表（一般）
  • Meiotic roles of FANCM-related helicases in C. elegans  [通常講演]
    Kyosuke Torimaru; Karin Matsushita; Takamune T. Saito
    23rd International C. elegans Conference 2021年06月 ポスター発表
  • 減数分裂組換えの分子制御機構  [通常講演]
    齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2021年03月 口頭発表（一般）
  • ホリデイジャンクション解離酵素SLX-1による交差型組換え抑制機構の解明に向けて  [通常講演]
    嵜本優斗; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2021年01月 口頭発表（一般）
  • ヒストンH3K9メチル化酵素の減数分裂組換えでの役割  [通常講演]
    納家朋里; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2021年01月 口頭発表（一般）
  • An enhancer/suppressor screening of mutants of a Holliday junction resolvase  [通常講演]
    南寛仁; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2020年01月 口頭発表（一般）
  • Meiotic functions of dicer-related helicase  [通常講演]
    鳥丸恭佑; 齋藤貴宗
    関西地区線虫勉強会 2020年01月 口頭発表（一般）
  • ホリデイジャンクションリゾルベースhim-18/SLX4のエンハンサー/サプレッサースクリーニング  [通常講演]
    Hussam Alshareef; 南寛仁; 荒谷祥; Monica Colaiacovo; 齋藤貴宗
    第25回DNA複製、組換え、修復ワークショップ（奈良春日野フォーラム甍別館） 2019年11月 口頭発表（一般）
  • An EMS mutagenesis screen identified both enhancer and suppressor mutants of him- 18/slx4 in C. elegans.  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Hussam Alshareef; Hirohito Minami; Sho Aratani; Dan Pagano; Scott Kennedy; Monica P. Colaiacovo
    22nd International C. elegans Conference, Los Angeles, CA, USA 2019年06月 ポスター発表
  • Crossover control in C. elegans meiosis  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    関西地区線虫勉強会、大阪 2019年01月 口頭発表（一般）
  • An EMS mutagenesis screen identified both enhancer and suppressor mutants of him-18/SLX4 in C. elegans  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Hussam Alshareef; Monica Colaiacovo
    Abcam Meeting, Mechanisms of Recombination. Alicante, Spain 2016年05月 ポスター発表
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ —生殖細胞のゲノム統合性維持機構—  [招待講演]
    齋藤貴宗
    Invited Seminer. Center for Life Science, Boston, MA, USA 2015年12月 口頭発表（招待・特別）
  • Regulation of crossover formation during C. elegans meiosis  [招待講演]
    Takamune T. Saito
    Structure-Specific Endonucleases in Genome Stability Meeting. Brno, Czech Republic 2015年11月 口頭発表（招待・特別）
  • Regulation of crossover formation by structure-specific endonucleases  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica P. Colaiácovo
    Life Sciences Undergraduate Research Fair. Harvard University, Cambridge, MA, USA 2015年11月 ポスター発表
  • Maintenance of genomic integrity by multinuclease complex  [通常講演]
    齋藤貴宗
    第1回 加齢医学研究所リトリート、 蔵王ロイヤルホテル 2015年03月 ポスター発表
  • 多重ヌクレエース複合体によるゲノム安定性の維持  [通常講演]
    齋藤貴宗
    第37回日本分子生物学会年会 2014年11月 口頭発表（一般）
  • "Shuriken" prevents infertility -Genomic integrity in germ cells-  [通常講演]
    齋藤貴宗
    合同セミナー 東北大学加齢医学研究所 2014年09月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • 多重ヌクレエース複合体によるゲノム安定性の維持  [通常講演]
    齋藤貴宗
    がん若手ワークショップ, 蓼科グランドホテル 2014年09月 口頭発表（一般）
  • “Shuriken” prevents infertility — Genomic integrity in Germ Cells —  [招待講演]
    齋藤貴宗
    The 1761th Biological Symposium (Invited seminar) National Institute of Genetics, Mishima, Japan 2014年07月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ —生殖細胞のゲノム統合性維持機構—  [通常講演]
    齋藤貴宗
    セミナー 千葉大学大学院 融合科学研究科 2014年04月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ —生殖細胞のゲノム統合性維持機構—  [通常講演]
    齋藤貴宗
    理研セミナー（招待講演）理化学研究所 和光本部 2014年04月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ —生殖細胞のゲノム統合性維持機構—  [招待講演]
    齋藤貴宗
    加齢研セミナー（招待講演）東北大学 加齢医学研究所 2014年04月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ―生殖細胞のゲノム統合性維持機構―  [招待講演]
    齋藤貴宗
    Invited Seminar (The 50th Izayoi meeting). Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2014年01月 口頭発表（招待・特別）
  • “Shuriken” prevents infertility — Genomic integrity in Germ Cells —  [通常講演]
    齋藤貴宗
    セミナー 大阪大学 蛋白質研究所 2013年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ —生殖細胞のゲノム統合性維持機構—  [招待講演]
    齋藤貴宗
    分子遺伝学セミナー（招待講演） 大阪大学 微生物病研究所 2013年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ —生殖細胞のゲノム統合性維持機構—  [招待講演]
    齋藤貴宗
    招待講演 近畿大学 生物理工学部 2013年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “Shuriken” prevents infertility — Genomic integrity in Germ Cells —  [招待講演]
    齋藤貴宗
    iCeMS セミナー（招待講演） 京都大学 物質－細胞統合システム拠点（iCeMS 2013年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “Shuriken” prevents infertility — Genomic integrity in Germ Cells —  [招待講演]
    齋藤貴宗
    招待講演 東京大学 分子細胞生物学研究所 2013年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • “手裏剣”が不妊を防ぐ —生殖細胞のゲノム統合性維持機構—  [招待講演]
    齋藤貴宗
    招待講演 東京大学大学院 総合文化研究科 2013年12月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • 構造特異的エンドヌクレエースの相互作用が線虫の減数分裂組換えを制御する  [招待講演]
    齋藤貴宗; Doris Liu; Hyun-Min Kim; Katherine Meyer; Monica Colaiacovo
    第36回日本分子生物学会年会、神戸ポートアイランド 2013年12月 口頭発表（招待・特別）
  • Interplay between structure-specific endonucleases for crossover control during C. elegans meiosis.  [通常講演]
    Takamune T.Saito; Doris Liu; Hyun-Min Kim; Katherine Meyer; Monica P. Colaiacovo
    19th International C. elegans meeting. Los Angeles, CA, USA 2013年06月 口頭発表（一般）
  • Interplay between structure-specific nucleases for crossover control during C. elegans meiosis  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    Boston Area Mitosis Meiosis Meeting. Whitehead Institute Cambridge, MA, USA 2013年04月 口頭発表（一般）
  • Interplay between structure-specific nucleases for crossover control during C. elegans meiosis  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica P. Colaiácovo
    Department of Genetics Retreat. Broad Institute, Cambridge, MA, USA 2013年02月 ポスター発表
  • Interplay between structure-specific nucleases for crossover control during C. elegans meiosis  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    Department Data Journal Club. Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2013年01月 口頭発表（一般）
  • Interplay between structure-specific endonucleases for crossover control during C. elegans meiosis  [通常講演]
    19th International C. elegans meeting 2013年
  • Interplay between structure-specific endonucleases for crossover control during C. elegans meiosis  [通常講演]
    19th International C. elegans meeting 2013年
  • Interplay between structure-specific endonucleases for crossover control during C. elegans meiosis  [通常講演]
    36th Annual Meeting of the Molecular Biology Society of Japan 2013年
  • Interplay between structure-specific endonucleases for crossover control during C. elegans meiosis  [通常講演]
    36th Annual Meeting of the Molecular Biology Society of Japan 2013年
  • Interplay between structure-specific nucleases for executing crossover formation in C. elegans  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    Longwood Area Worm Meeting. Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2012年10月 口頭発表（一般）
  • Interplay between structure-specific nucleases in excuting crossover formation in C. elegans  [招待講演]
    Takamune T.Saito; Doris Liu; Hyun-Min Kim; Katherine Meyer; Monica P. Colaiacovo
    EMBO Workshop, Structure-specific nucleases in DNA replication & repair. Côte d'Azur,France 2012年09月 口頭発表（招待・特別）
  • Interplay between structure-specific nucleases to make crossovers during C. elegans meiosis.  [通常講演]
    Takamune T.Saito; Doris Liu; Hyun-Min Kim; Katherine Meyer; Monica Colaiacovo
    EMBO Workshop, Structure-specific nucleases in DNA replication & repair. Côte d'Azur,France (Poster) 2012年09月 ポスター発表
  • SLX-1 is required for the maintenance of genomic integrity in the Caenorhabditis elegans germline  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Firaz Mohideen; Kate Meyer; Wade Haper; Monica P. Colaiácovo
    The EMBO Conference on Meiosis. Paestum, Italy 2011年09月 ポスター発表
  • SLX-1 is required for the maintenance of genomic integrity in the C. elegans germline  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    Department Data Journal Club. Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2011年03月 口頭発表（一般）
  • SLX-1 is required for genomic integrity in the C. elegans germline  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Firaz Mohideen; Kate Meyer; Wade Haper; Monica P. Colaiácovo
    Department of Genetics Retreat. Broad Institute, Cambridge, MA, USA 2011年02月 ポスター発表
  • SLX-1 is required for genomic integrity in the C. elegans germline  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Kate Meyer; Monica P. Colaiácovo
    10th Gordon Research Conference on Meiosis. Colby-Sawyer College, New London, NH, USA 2010年06月 ポスター発表
  • The Nucleases involved in Holliday junction resolvase complex share their function in the C. elegans germline  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica Colaiacovo
    Department of Genetics Retreat. Broad Institute, Cambridge, MA, USA 2010年03月 ポスター発表
  • HIM-18/SLX-4 interacts with SLX-1 and XPF-1 and maintains genomic integrity in the germline by processing recombination intermediates  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    Boston Area Worm Meeting. Massachusetts Institute of Technology, Cambridge, MA, USA 2009年12月
  • HIM-18/SLX-4 interacts with SLX-1 and XPF-1 and maintains genomic integrity in the germline by processing recombination intermediates  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    Department Data Journal Club. Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2009年11月 口頭発表（一般）
  • HIM-18/SLX-4 interacts with SLX-1 and XPF-1 and maintains genomic integrity in the germline by processing recombination intermediates  [通常講演]
    Takamune T. Saito
    Longwood Area Worm Meeting. Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2009年10月 口頭発表（一般）
  • 線虫の生殖細胞におけるゲノム統合性の維持  [招待講演]
    齋藤貴宗
    招待講演（分子遺伝学セミナー）、大阪大学 微生物病研究所 2009年09月 公開講演，セミナー，チュートリアル，講習，講義等
  • Maintaining genomic integrity in the C. elegans germline  [招待講演]
    Takamune T. Saito; Jillian L. Youds; Simon Boulton; Monica P. Colaiacovo
    FASEB Summer Research Conferences, Genetic Recombination. Snowmass, CO, USA 2009年08月 口頭発表（招待・特別）
  • C. elegans HIM-18/SLX-4 interacts with SLX-1 and XPF-1and maintains genomic integrity in the germline by processing recombination intermediates.  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Jillian; L. Youds; Simon Boulton; Monica Colaiacovo
    FASEB Summer Research Conferences, Genetic Recombination. Snowmass, CO. USA (Poster). 2009年08月 ポスター発表
  • C. elegans HIM-18/SLX-4 interacts with SLX-1 and XPF-1and maintains genomic integrity in the germline by processing recombination intermediates  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica Colaiacovo
    17th International C. elegans Meeting, Los Angeles, CA. USA 2009年06月 ポスター発表
  • HIM-18 is required for genome integrity in the C. elegans germline  [通常講演]
    齋藤貴宗
    C. elegans Development and Evolution Meeting. Madison, WI, USA 2008年06月 口頭発表（一般）
  • HIM-18 is required for genome integrity in the C. elegans germline  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica Colaiacovo
    Meiosis Gordon Conference. Colby-Sawyer College, New London, NH, USA 2008年06月 ポスター発表
  • HIM-18 involved in genomic integrity at gonad  [通常講演]
    齋藤貴宗
    Longwood Area Worm Meeting. Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2008年03月 口頭発表（一般）
  • HIM-18 is required for genome integrity in the C. elegans germline.  [通常講演]
    C. elegans Development and Evolution Meeting 2008年
  • HIM-18 is required for genome integrity in the C. elegans germline.  [通常講演]
    C. elegans Development and Evolution Meeting 2008年
  • HIM-18, a new regulater of meiotic progression and chromosome segregation  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica Colaiacovo
    8th European Meiosis Meeting. Hayama, Japan 2007年09月 ポスター発表
  • HIM-18, a new regulater of meiotic progression and chromosome segregation  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica Colaiacovo
    16th International C. elegans Meeting, Los Angeles, CA. USA 2007年06月 ポスター発表
  • HIM-18, a new regulater of meiotic progression and chromosome segregation  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Monica Colaiacovo
    Department of Genetics Retreat. Salve Regina University, Newport, RI, USA 2007年05月 ポスター発表
  • 分裂酵母・減数分裂前期の核運動を制御するコイルドコイルタンパク質の単離と機能解析  [通常講演]
    齋藤貴宗
    大阪大学微生物病研究所研究業績発表会 銀杏会館 2006年01月 口頭発表（一般）
  • Identification and characterization of meiotic coiled-coil proteins (Mcp) in fission yeast  [招待講演]
    齋藤貴宗
    Invited seminar. Stanford University, Stanford, CA, USA 2005年11月 口頭発表（招待・特別）
  • Identification and characterization of meiotic coiled-coil proteins (Mcp) in fission yeast  [招待講演]
    齋藤貴宗
    Invited seminar. Stower Institute, Kansas City, MO, USA 2005年11月 口頭発表（招待・特別）
  • Identification and characterization of meiotic coiled-coil proteins (Mcp) in fission yeast  [招待講演]
    齋藤貴宗
    Invited seminar. National Institute of Health, Bethesda, MD, USA 2005年11月 口頭発表（招待・特別）
  • Identification and characterization of meiotic coiled-coil proteins (Mcp) in fission yeast  [招待講演]
    齋藤貴宗
    Invited seminar. Harvard Medical School, Boston, MA, USA 2005年11月 口頭発表（招待・特別）
  • Mcp5, a meiotic cell cortex protein, is required for dynein-mediated oscillatory nuclear movement  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Daikuke Okuzaki; Hiroshi Nojima
    The second East Coast Regional Fission Yeast Meeting. Miami, FL, USA 2005年11月 口頭発表（一般）
  • 分裂酵母の減数分裂特異的ゴルジ体タンパク質Mcp3とMcp4の機能解析  [通常講演]
    大高彩美; 齋藤貴宗; 東岸任弘; 奥崎大介; 野島博
    第38回 酵母遺伝学フォーラム、アミュゼ柏 2005年09月 ポスター発表
  • 相同組換えにおける減数分裂特異的なコイルドコイルタンパクの役割  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 大高彩美; 奥崎大介; 笠間隆志; 野島博
    第38回 酵母遺伝学フォーラム、アミュゼ柏 2005年09月 口頭発表（一般）
  • Mcp5, a meiotic cell cortex protein, is required for proper homologous pairing mediated by oscillatory nuclear movement in fission yeast.  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Daikuke Okuzaki; Hiroshi Nojima
    7th European Meiosis Meeting. El Escorial, Spain 2005年09月 ポスター発表
  • Mcp5, a meiotic cell cortex protein, is required for dynein-mediated nuclear movement.  [通常講演]
    East Coast pombe meeting 2005年
  • Mcp5, a meiotic cell cortex protein, is required for dynein-mediated nuclear movement.  [通常講演]
    East Coast pombe meeting 2005年
  • 分裂酵母Mcp6とMcp5を介したホーステイル運動制御機構の解析  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 奥崎大介; 笠間隆志; 野島博
    第27回 日本分子生物学会、神戸ポートアイランド 2004年12月 ポスター発表
  • 分裂酵母Mcp6は減数分裂特異的なSPBコンポーネントでありホーステイル運動と相同組換えに必要である  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 奥崎大介; 笠間隆志; 野島博
    第37回 酵母遺伝学フォーラム、島根大学大学会館 2004年09月 口頭発表（一般）
  • 分裂酵母の減数分裂特異的コイルドコイル遺伝子群の機能解析  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 奥崎大介; 笠間隆志; 野島博
    ゲノム４領域班会議 神戸 2004年08月 ポスター発表
  • Mcp1, a meiosis-specific coiled-coil protein, localizes at spindle pole body and is required for horsetail movement.  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Takahiro Tougan; Daikuke Okuzaki; Takashi Kasama; Hiroshi Nojima
    The third international Fission yeast meeting. San Diego, CA, USA 2004年08月 ポスター発表
  • Mek1 regulates pre-meiotic S phase and homologous recombination in fission yeast.  [通常講演]
    Takahiro Tougan; Daikuke Okuzaki; Takamune T. Saito; Takashi Kasama; Ayami Ohtaka; Hiroshi Nojima
    The third international Fission yeast meeting. San Diego, CA, USA 2004年08月 ポスター発表
  • Meiotic phosphorylation cascade mediated by Mek1 kinase in fission yeast  [通常講演]
    Hiroshi Nojima; Daikuke Okuzaki; Takamune T. Saito; Takashi Kasama; Ayami Ohtaka; Takahiro Tougan
    The third international Fission yeast meeting 2004年08月 口頭発表（一般）
  • 分裂酵母の減数分裂特異的コイルドコイル遺伝子群の機能解析  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 奥崎大介; 笠間隆志; 野島博
    第468回 微研集談会 大阪大学 微生物病研究所 2004年07月 口頭発表（一般）
  • 分裂酵母のMcp7-Meu13複合体は減数分裂組換えに必須であり、その欠損はチェックポイントを発動させる  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 奥崎大介; 笠間隆志; 野島博
    第26回 日本分子生物学会、神戸ポートアイランド 2003年12月 口頭発表（一般）
  • Ccp7 plays a role in meiotic recombination checkpoint of fission yeast  [通常講演]
    Takamune T. Saito; Takahiro Tougan; Daikuke Okuzaki; Takashi Kasama; Hiroshi Nojima
    6th European Meiosis Meeting 2003年09月 口頭発表（一般）
  • Meiotic recombination checkpoint control of S. pombe.  [通常講演]
    Hiroshi Nojima; Midori Shimada; Takamune T. Saito; Takashi Kasama; Takahiro Tougan
    6th European Meiosis Meeting. Obertraun, Austria 2003年09月 ポスター発表
  • Mek1 regulates meiotic checkpoint and homologous recombination in fission yeast.  [通常講演]
    Takahiro Tougan; Takamune T. Saito; Takashi Kasama; Hiroshi Nojima
    6th European Meiosis Meeting. Obertraun, Austria 2003年09月 ポスター発表
  • 分裂酵母Ccp7の減数分裂組換えチェックポイントにおける機能解析  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 奥崎大介; 笠間隆志; 野島博
    第36回 酵母遺伝学フォーラム、かずさアカデミアホール 2003年07月 口頭発表（一般）
  • Mcp7 plays a role in meiotic recombination checkpoint of fission yeast.  [通常講演]
    EMBO workshop "Meiosis" 2003年
  • Mcp7 plays a role in meiotic recombination checkpoint of fission yeast.  [通常講演]
    EMBO workshop "Meiosis" 2003年
  • 分裂酵母の減数分裂期特異的に発現する新規coiled-coil proteinをコードする遺伝子群の単離と機能解析  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 笠間隆志; 野島博
    第25回 日本分子生物学会、パシフィコ横浜 2002年12月 ポスター発表
  • 分裂酵母の減数分裂期特異的に発現する新規coiled-coil proteinの単離と機能解析  [通常講演]
    齋藤貴宗; 東岸任弘; 笠間隆志; 野島博
    第35回 酵母遺伝学フォーラム、広島大学学士会館 2002年07月 ポスター発表
  • Comprehensive isolation of meiosis-specific genes and non-coding RNAs from a cDNA library in S. pombe.  [通常講演]
    Takanori Watanabe; Takamune T. Saito; Kazuyuki Miyashita; Hiroshi Nojima
    The second international Fission yeast meeting. Kyoto, Japan 2002年03月 ポスター発表
  • Comprehensive isolation of meiosis-specific genes identifies novel proteins and unusual non-coding transcripts in Schizosaccharomyces pombe.  [通常講演]
    Takanori Watanabe; Kazuyuki Miyashita; Takamune T. Saito; Takahiro Yoneki; Yoshito Kakihara; Kentaro Nabeshima; Chikashi Shimoda; Hiroshi Nojima
    XXth International Conference on yeast Genetics and Molecular Biology. Prague, Czech Republic 2001年08月 ポスター発表

MISC

受賞

  • 2013年12月 日本分子生物学会 海外ポスドク招聘企画
     
    受賞者: 齋藤貴宗
  • 2011年05月 米国遺伝学会 DeLill Nasser Awards
     
    受賞者: 齋藤貴宗
  • 2010年09月 ハーバード大学医学部 博士研究員トラベルアワード
     
    受賞者: 齋藤貴宗
  • 2007年04月 日本学術振興会 海外特別研究員
     
    受賞者: 齋藤貴宗
  • 2006年04月 日本学術振興会 特別研究員
     PD（資格変更） 
    受賞者: 齋藤貴宗
  • 2005年04月 日本学術振興会 特別研究員
     DC2 
    受賞者: 齋藤貴宗
  • 2001年03月 近畿大学 学部長賞
     
    受賞者: 齋藤 貴宗

共同研究・競争的資金等の研究課題

  • 日本学術振興会：科学研究費助成事業
    研究期間 : 2023年04月 -2026年03月 
    代表者 : 齋藤 貴宗
  • 日本学術振興会：科学研究費助成事業
    研究期間 : 2019年04月 -2022年03月 
    代表者 : 齋藤 貴宗
     
    ファンコニ貧血原因遺伝子SLX4の線虫ホモログであるhim-18のサプレッサー変異の同定を試み、6-7の候補まで絞り込みに成功した。HIM-17はDNA二重鎖切断を染色体腕部に導入し、腕部での交差を促進する機能または染色体中央部での交差形成を抑制する機能があることを明らかにした。また、HIM-17がリン酸化酵素と脱リン酸化酵素の染色体局在を制御する事で第一減数分裂の正確な相同染色体分配に機能する事が明らかとなった。
  • 日本学術振興会：科学研究費助成事業
    研究期間 : 2015年04月 -2017年03月 
    代表者 : 齋藤 貴宗
  • 日本学術振興会：科学研究費助成事業
    研究期間 : 2015年04月 -2017年03月 
    代表者 : 齋藤 貴宗
  • 多重ヌクレエース複合体による組織別ゲノム統合性維持機構
    ライフサイエンス基礎科学研究
    研究期間 : 2014年
  • Maintenance of genomic integrity by multinuclease complex
    Basic Science Research on Life Science
    研究期間 : 2014年
  • 線虫の第一減数分裂前期におけるシナプトネマ複合体形成制御機構の解析
    日本学術振興会：Postdoctral Fellowship for Research Abroad
    研究期間 : 2007年04月 -2009年03月 
    代表者 : 齋藤貴宗
  • 日本学術振興会：科学研究費助成事業
    研究期間 : 2005年04月 -2006年 
    代表者 : 斉藤 貴宗
     
    本年度は昨年度から継続してきた減数分裂特異的なコイルドコイルタンパクの一つであるMcp5の機能解析をまとめる事ができ、年度初旬にJCB誌に掲載された。申請者はこれまでに、mxp5を含めて7つのmsp(meiotic coiled-coil protein)遺伝子を同定し、三つの遺伝子(msp7、mcp6、msp5)の機能解析に成功してきた。そこで減数分裂期のコイルドコイルタンパクの重要性を他生物種でも確認すべくモデルを多細胞生物である線虫に拡げた。マイクロアレイによって最近新たに同定された192種の生殖腺特異的な遺伝子をRNAi法でノックダウン後、その表現型をみるというスクリーニングで得られた遺伝子のうち、コイルドコイルモチーフを有する新規遺伝子について機能解析を行った。雌雄同体(XX)と雄(XO)の性をもつ線虫ではその生殖様式のほとんどは雌雄同体内で自家受精であるが、WTでは0.2%の確立で減数第一分裂でX染色体の不分離が起こり雄個体を生じる。目的遺伝子の変異株では雌雄同体の産子において雄の出現頻度がおよそ13%に上昇した。このことから原因遺伝子をhim-18(high incidence of males)と名付けた。さらに産子数の低下、胚性致死率の上昇もみられたことから、HIM-18が減数分裂期でX染色体を含めた相同染色体の正確な分配に関わっている事が予想できた。WTでは交差型組換えの結果生じる相同染色体間の物理的結合であるキアズマは二価染色体あたり1個しか認められなかった。him-18変異体では予備的な観察ながらキアズマ類似構造が複数認められた。このことからHIM-18がキアズマの分布を制御することで、相同染色体分配の正確な分配に関わっているであろうと予測している。本年度は分裂酵母に加え線虫でも減数分裂特異的なコイルドコイルタンパクの重要性が十分確認できる結果を得た。

担当経験のある科目

  • 分子遺伝学特論近畿大学大学院生物理工学研究科
  • 動物生命工学基礎近畿大学大学院生物理工学研究科
  • 専攻科目演習III近畿大学
  • 専攻科目演習II近畿大学
  • タンパク質機能学近畿大学
  • 遺伝子工学実験近畿大学
  • 専攻科目演習I近畿大学
  • 専門ゼミ近畿大学
  • 卒業研究近畿大学
  • 遺伝子工学概論近畿大学
  • 基礎ゼミ近畿大学
  • 動物学近畿大学

社会貢献活動

  • モデル生物線虫（C.elegans）の基本操作
    期間 : 2023年10月23日
    役割 : 講師
    種別 : 出前授業
    主催者・発行元 : 向陽高校
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 向陽SSH国際科学交流実験講座（英国ダートフォードグラマースクール共同実験講座）
  • ＤＮＡを観察しよう！ ～電気泳動によるＤＮＡの分離と観察～（共同）
    期間 : 2023年09月01日
    役割 : 実演
    種別 : その他
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 体験実習（近畿大学附属中学校）
  • なぜ兄弟姉妹は違うのか？
    期間 : 2023年08月23日
    役割 : 講師
    種別 : 出前授業
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 模擬講義（豊中高等学校）
  • 染色体から見る遺伝の仕組み
    期間 : 2023年08月05日
    役割 : 実演
    種別 : サイエンスカフェ
    イベント・番組・新聞雑誌名 : Bost Science caffe（新宮商工会議所）
  • 線虫を使った遺伝の研究
    期間 : 2023年07月30日
    役割 : 実演
    種別 : その他
    イベント・番組・新聞雑誌名 : オープンキャンパス研究実験室公開
  • 線虫の基本操作と生殖腺の解剖
    期間 : 2023年07月14日
    役割 : 実演
    種別 : その他
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 体験実習（近畿大学附属泉州高等学校）
  • 兄弟姉妹はなぜ違うのか
    期間 : 2022年08月21日
    役割 : 実演
    種別 : 出前授業
    主催者・発行元 : 近畿大学
    イベント・番組・新聞雑誌名 : ミニ講義（近畿大学オープンキャンパス）
  • 研究室見学会
    期間 : 2022年08月05日
    役割 : 実演
    種別 : 施設一般公開
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 和歌山県高等学校進路指導研究会
  • 無脊椎動物の遺伝子工学
    期間 : 2022年07月24日
    役割 : 実演
    種別 : その他
    イベント・番組・新聞雑誌名 : オープンキャンパス体験イベント
  • オープンキャンパス研究実験室公開
    期間 : 2021年09月05日
    役割 : 実演
    種別 : 施設一般公開
  • オープンキャンパス体験イベントブース
    期間 : 2019年09月22日
    役割 : 実演
    種別 : その他
  • 研究室見学会
    期間 : 2019年08月30日
    役割 : 実演
    種別 : 施設一般公開
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 向陽高等学校
  • 子供科学体験教室
    期間 : 2019年07月28日
    役割 : 実演
    イベント・番組・新聞雑誌名 : オープンキャンパス
  • 線虫と遺伝の話
    期間 : 2019年06月06日
    役割 : 実演
    種別 : 出前授業
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 模擬講義（精華学園高等学校和歌山学習センター）
  • 研究室見学会
    期間 : 2018年12月13日
    役割 : 実演
    種別 : 施設一般公開
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 報徳学園中学校・高等学校
  • ＤＮＡをみてみよう ～電気泳動によるＤＮＡの観察～（共同）
    期間 : 2018年08月29日
    役割 : 実演
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 体験実習（近畿大学附属中学校）
  • 研究室見学会
    期間 : 2018年07月13日
    役割 : 実演
    イベント・番組・新聞雑誌名 : 和歌山県高等学校進路指導研究会

メディア報道

  • 和歌山放送ラジオ「ボックス」
    報道 : 2021年08月03日
    発行元・放送局 : 和歌山放送
    番組・新聞雑誌 : 近畿大学生物理工学部ラジオ講座
    　テレビ・ラジオ番組
  • 和歌山放送ラジオ「ボックス」
    報道 : 2018年11月06日
    発行元・放送局 : 和歌山放送
    番組・新聞雑誌 : 近畿大学生物理工学部ラジオ講座
    　テレビ・ラジオ番組

学術貢献活動

  • Review Editor
    期間 : 2021年05月 - 現在
    役割 : 審査・評価
    種別 : 査読等
    主催者・責任者 : Frontiers in Physiology
  • セッションチェア（第40回染色体ワークショップ、第21回核ダイナミクス研究会）
    期間 : 2022年12月20日
    役割 : パネル司会・セッションチェア等
    種別 : 学会・研究会等
  • 第二回遺伝学セミナー（ゲストスピーカー：Hussam Alshareef, University of Nevada, Reno）
    期間 : 2022年09月21日
    役割 : 企画立案・運営等
  • 論文査読（Scientific Reports）
    期間 : 2022年
    役割 : 査読
    種別 : 査読等
  • 論文査読（PLoS Genetics）
    期間 : 2021年
    役割 : 査読
    種別 : 査読等
  • セッションチェア（第25回DNA複製、組換え、修復ワークショップ（セッション7））
    期間 : 2019年11月10日
    役割 : パネル司会・セッションチェア等
  • 第一回遺伝学セミナー（ゲストスピーカー: JoAnne Engebrecht, UC Davis)
    期間 : 2018年11月19日
    役割 : 企画立案・運営等
    種別 : 大会・シンポジウム等
  • いざよいの夕べ勉強会
    期間 : 2015年08月 - 2018年03月
    役割 : 企画立案・運営等
    種別 : 学会・研究会等
  • Editor
    期間 : 2012年
    役割 : 審査・評価
    種別 : 査読等
    主催者・責任者 : ISRN Genetics

その他

  • 2019年04月 - 2020年03月  シロアリ駆除剤の生殖腺への影響 
    近畿大学学内研究助成金 奨励研究助成金 SR14 研究内容: 線虫を用いてシロアリ駆除剤の生殖細胞に与える影響を分子レベルで解析する。

その他のリンク

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